| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-39页 |
| ·引言 | 第12页 |
| ·HIV 与抗艾滋病药物研究现状 | 第12-20页 |
| ·HIV 结构特征 | 第12-14页 |
| ·HIV 感染和复制机制 | 第14-17页 |
| ·感染 | 第15-16页 |
| ·逆转录 | 第16页 |
| ·整合 | 第16页 |
| ·转录 | 第16-17页 |
| ·包装 | 第17页 |
| ·抗HIV 药物的靶位设计 | 第17-18页 |
| ·阻止病毒进入宿主细胞 | 第17页 |
| ·抑制HIV 的酶类 | 第17页 |
| ·抑制HIV 的基因表达 | 第17-18页 |
| ·抗艾滋病药物研究现状 | 第18-20页 |
| ·核苷类逆转录酶抑制剂（NRTIs） | 第18-19页 |
| ·核苷酸类逆转录酶抑制剂（NtRTIs） | 第19页 |
| ·非核苷类逆转录酶抑制剂（NNRTIs） | 第19页 |
| ·蛋白酶抑制剂（PIs） | 第19-20页 |
| ·侵入抑制剂（EIs） | 第20页 |
| ·研究抗艾滋病药物的方法 | 第20页 |
| ·HIV 逆转录酶活性及抑制活性测定方法研究现状 | 第20-26页 |
| ·HIV 逆转录酶（RT）的结构和功能 | 第21页 |
| ·HIV 逆转录酶活性及抑制活性测定方法研究进展 | 第21-26页 |
| ·Roche 试剂盒方法 | 第24-25页 |
| ·均相时间分辨荧光方法 | 第25-26页 |
| ·本论文涉及的一些研究技术 | 第26-30页 |
| ·免疫分析 | 第26-28页 |
| ·免疫分析的类型 | 第27页 |
| ·竞争型 | 第27页 |
| ·夹心型 | 第27页 |
| ·免疫分析的方法 | 第27-28页 |
| ·异相免疫分析 | 第27-28页 |
| ·均相免疫分析 | 第28页 |
| ·时间分辨荧光技术 | 第28-30页 |
| ·时间分辨荧光测定原理 | 第28-29页 |
| ·稀土荧光标记物的研究进展 | 第29-30页 |
| ·本课题研究目的及论文工作设想 | 第30-32页 |
| 参考文献 | 第32-39页 |
| 第二章 HIV-1 逆转录酶活性测定方法的建立与初步考察 | 第39-64页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·方法的建立 | 第39-41页 |
| ·实验部分 | 第41-46页 |
| ·实验材料与仪器 | 第41-43页 |
| ·实验材料 | 第41-42页 |
| ·实验仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-46页 |
| ·实验用缓冲液 | 第43-44页 |
| ·操作步骤 | 第44-45页 |
| ·方法可行性研究 | 第45页 |
| ·包被的考察 | 第45-46页 |
| ·封闭的考察 | 第46页 |
| ·逆转录反应的考察 | 第46页 |
| ·逆转录反应后混合物特异性键合的考察 | 第46页 |
| ·荧光标记物特异性键合的考察 | 第46页 |
| ·结果与讨论 | 第46-62页 |
| ·方法可行性研究 | 第46-48页 |
| ·包被的考察 | 第48-52页 |
| ·封闭的考察 | 第52-56页 |
| ·逆转录反应的考察 | 第56-58页 |
| ·逆转录反应后混合物特异性键合的考察 | 第58-60页 |
| ·荧光标记物特异性键合的考察 | 第60-62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 第三章 HIV-1 逆转录酶活性测定方法的条件优化 | 第64-79页 |
| ·引言 | 第64页 |
| ·实验部分 | 第64-66页 |
| ·实验材料与仪器 | 第64页 |
| ·实验材料 | 第64页 |
| ·实验仪器 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·实验用缓冲液 | 第64-65页 |
| ·操作步骤 | 第65页 |
| ·biotin-dUTP 浓度的优化 | 第65页 |
| ·digoxigenin-dUTP 浓度的优化 | 第65页 |
| ·用于包被的抗digoxigenin 抗体稀释液的选择 | 第65页 |
| ·包被方式的选择 | 第65-66页 |
| ·抗digoxigenin 抗体包被浓度的优化 | 第66页 |
| ·BSA 封闭浓度的优化 | 第66页 |
| ·SA(BSA)0.9(BHHCT-Eu3+)46 稀释倍数的优化 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-78页 |
| ·biotin-dUTP 浓度的优化 | 第66-67页 |
| ·digoxigenin-dUTP 浓度的优化 | 第67-69页 |
| ·用于包被的抗digoxigenin 抗体稀释液的选择 | 第69-71页 |
| ·包被方式的选择 | 第71-72页 |
| ·抗digoxigenin 抗体包被浓度的优化 | 第72-74页 |
| ·BSA 封闭浓度的优化 | 第74-76页 |
| ·SA(BSA)0.9(BHHCT-Eu3+)46 稀释倍数的优化 | 第76-78页 |
| ·小结 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-79页 |
| 第四章 HIV-1 逆转录酶活性及其抑制活性测定方法的评价 | 第79-92页 |
| ·引言 | 第79页 |
| ·实验部分 | 第79-81页 |
| ·实验材料与仪器 | 第79-80页 |
| ·实验材料 | 第79页 |
| ·实验仪器 | 第79-80页 |
| ·实验方法 | 第80-81页 |
| ·实验用缓冲液 | 第80页 |
| ·操作步骤 | 第80页 |
| ·线性及检测限的考察 | 第80页 |
| ·批间重复性的考察 | 第80-81页 |
| ·对已知抑制剂的HIV-1 逆转录酶抑制活性的考察 | 第81页 |
| ·对生物素干扰的考察 | 第81页 |
| ·对应用在天然产物粗提物的考察 | 第81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-90页 |
| ·线性及检测限的考察 | 第81-83页 |
| ·批间重复性的考察 | 第83-85页 |
| ·抑制剂的抑制率计算 | 第85页 |
| ·半数抑制浓度IC_(50) 的计算 | 第85-86页 |
| ·对已知抑制剂的HIV-1 逆转录酶抑制活性的考察 | 第86-87页 |
| ·对生物素干扰的考察 | 第87-88页 |
| ·对应用在天然产物粗提物的考察 | 第88-89页 |
| ·其它方面 | 第89-90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-92页 |
| 第五章 HIV-1 逆转录酶抑制活性测定方法的应用 | 第92-101页 |
| ·引言 | 第92页 |
| ·实验部分 | 第92-96页 |
| ·实验材料与仪器 | 第92页 |
| ·实验材料 | 第92页 |
| ·实验仪器 | 第92页 |
| ·实验方法 | 第92-96页 |
| ·实验用缓冲液 | 第92页 |
| ·HIV-1 逆转录酶抑制活性检测操作步骤 | 第92-93页 |
| ·海绵粗提物的制备 | 第93-94页 |
| ·繁茂膜海绵粗提物的萃取分离 | 第94-96页 |
| ·两种纯物质的抑制活性检测 | 第96页 |
| ·结果与讨论 | 第96-100页 |
| ·不同海绵的 HIV-1 逆转录酶抑制剂潜在研究价值的评估 | 第96-97页 |
| ·繁茂膜海绵粗提物萃取前后的活性跟踪 | 第97-98页 |
| ·对纯化合物的 HIV-1 逆转录酶抑制活性的测定 | 第98-100页 |
| ·小结 | 第100-101页 |
| 第六章 结论 | 第101-104页 |
| 作者简介及发表文章 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105页 |
