| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 1． 前言 | 第9-19页 |
| 1．1 木聚糖 | 第9-10页 |
| 1．2 木聚糖酶 | 第10页 |
| 1．3 低聚木糖 | 第10-16页 |
| 1．3．1 低聚木糖的理化性质 | 第11-12页 |
| 1．3．2 低聚木糖的生理功能 | 第12-13页 |
| 1．3．3 低聚木糖的应用现状和前景 | 第13-14页 |
| 1．3．4 低聚木糖制备原料的选择 | 第14页 |
| 1．3．5 木聚糖的制备方法选择 | 第14-15页 |
| 1．3．6 低聚木糖的制备方法选择 | 第15页 |
| 1．3．7 低聚木糖的精制 | 第15-16页 |
| 1．4 低聚木糖的检测 | 第16-18页 |
| 1．4．1 糖类的几种常用检测方法及其局限性 | 第16页 |
| 1．4．2 毛细管电泳分析方法的特点 | 第16-17页 |
| 1．4．3 糖的毛细管电泳分析 | 第17-18页 |
| 1．5 研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-23页 |
| 2．1 材料 | 第19页 |
| 2．1．1 玉米芯粉 | 第19页 |
| 2．1．2 黑曲霉菌株 | 第19页 |
| 2．1．3 试剂 | 第19页 |
| 2．2 仪器 | 第19-20页 |
| 2．3 方法 | 第20-23页 |
| 2．3．1 黑曲霉培养 | 第20页 |
| 2．3．2 粗酶提取方法 | 第20页 |
| 2．3．3 木聚糖酶活力测定 | 第20页 |
| 2．3．4 玉米芯的预处理 | 第20页 |
| 2．3．5 碱法制备木聚糖 | 第20-21页 |
| 2．3．6 总糖的测定 | 第21页 |
| 2．3．7 低聚木糖的酶法制备 | 第21页 |
| 2．3．8 低聚木糖的纯化 | 第21页 |
| 2．3．9 毛细管电泳区带电泳检测 | 第21-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-39页 |
| 3．1 黑曲霉培养条件的选择 | 第23-24页 |
| 3．1．1 最佳碳源的选择 | 第23页 |
| 3．1．2 最佳氮源的选择 | 第23-24页 |
| 3．1．3 最适氮源添加量的选择 | 第24页 |
| 3．1．4 培养时间对木聚糖酶酶活的影响 | 第24页 |
| 3．2 木聚糖酶提取条件的选择 | 第24-26页 |
| 3．2．1 固液浸提比对木聚糖酶活力的影响 | 第24-25页 |
| 3．2．2 盐析木聚糖酶(NH_4)_2SO_4饱和度的选择 | 第25-26页 |
| 3．3 木聚糖酶的性质 | 第26-29页 |
| 3．3．1 酶促反应最适温度和最适pH值 | 第26-27页 |
| 3．3．2 热稳定性和酸碱稳定性 | 第27-28页 |
| 3．3．3 阳离子对酶活力的影响 | 第28-29页 |
| 3．4 低聚木糖毛细管电泳检测条件 | 第29-32页 |
| 3．4．1 缓冲液浓度和pH值的选择 | 第29-31页 |
| 3．4．2 电泳检测电压的选择 | 第31页 |
| 3．4．3 线性范围、检测限、精密度和回收率 | 第31-32页 |
| 3．5 玉米芯粉预处理条件的选择 | 第32-33页 |
| 3．6 木聚糖碱法提取条件的选择 | 第33-34页 |
| 3．7 酶法制备低聚木糖条件的选择 | 第34-36页 |
| 3．7．1 反应底物量的确定 | 第34-35页 |
| 3．7．2 反应时间的确定 | 第35页 |
| 3．7．3 设计正交实验确定反应最优条件 | 第35-36页 |
| 3．8 低聚木糖的纯化 | 第36-39页 |
| 4 结论 | 第39-40页 |
| 4．1 黑曲霉木聚糖酶制备培养方法 | 第39页 |
| 4．2 黑曲霉菌株 A1产木聚搪酶的性质 | 第39页 |
| 4．3 酶法制取低聚木糖的方法 | 第39页 |
| 4．4 低聚木糖的毛细管电泳检测方法 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 缩略语表 | 第43-44页 |
| 研究生阶段发表的相关论文 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45页 |