| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-39页 |
| ·紫花苜蓿的营养价值及生态功能 | 第15-16页 |
| ·紫花苜蓿的营养价值及所含的生物活性物质 | 第15页 |
| ·紫花苜蓿的生态功能 | 第15-16页 |
| ·逆境条件下植物的适应机制 | 第16-22页 |
| ·植物体内抗氧化系统对逆境的响应 | 第16-20页 |
| ·逆境条件下的渗透调节 | 第20-21页 |
| ·作物不同发育阶段对逆境的抗性 | 第21-22页 |
| ·紫花苜蓿再生体系建立的研究进展 | 第22-24页 |
| ·基因型对苜蓿再生的影响 | 第22-23页 |
| ·外植体对苜蓿再生的影响 | 第23页 |
| ·培养基类型对苜蓿再生的影响 | 第23页 |
| ·激素配比对苜蓿再生的影响 | 第23-24页 |
| ·紫花苜蓿转化体系建立的研究进展 | 第24-25页 |
| ·苜蓿的遗传转化方法 | 第24-25页 |
| ·影响苜蓿遗传转化的因素 | 第25页 |
| ·抗逆性转基因苜蓿研究进展 | 第25-27页 |
| ·植物抗逆基因工程相关的启动子和基因 | 第27-36页 |
| ·组成型与胁迫诱导型启动子研究 | 第27-29页 |
| ·核苷二磷酸激酶及其基因NDPK | 第29-34页 |
| ·胆碱氧化酶及其基因codA | 第34-36页 |
| ·目前研究存在的问题 | 第36-37页 |
| ·本论文的研究目的、意义和技术路线 | 第37-39页 |
| 第二章 不同苜蓿萌发期和苗期对盐渍、干旱及低温的生理响应 | 第39-53页 |
| ·材料与方法 | 第39-42页 |
| ·实验材料培养及处理 | 第39-41页 |
| ·测定指标及方法 | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-49页 |
| ·萌发期盐渍、干旱及低温胁迫条件的选择 | 第42-45页 |
| ·NaCl 胁迫对紫花苜蓿萌发特性的影响 | 第45页 |
| ·PEG 胁迫对紫花苜蓿萌发特性的影响 | 第45页 |
| ·10℃低温处理对紫花苜蓿萌发特性的影响 | 第45-47页 |
| ·NaCl 胁迫条件下紫花苜蓿叶片Fv/Fm 及总叶绿素含量的变化 | 第47页 |
| ·PEG 胁迫条件下紫花苜蓿Fv/Fm 及总叶绿素含量的变化 | 第47-48页 |
| ·MV 介导的氧化胁迫条件下紫花苜蓿叶片相对质膜透性的变化 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| ·萌发期苜蓿对各种逆境的忍耐性 | 第49-50页 |
| ·苗期苜蓿对各种逆境的忍耐性 | 第50-51页 |
| ·苜蓿不同发育阶段耐逆性的关系 | 第51页 |
| ·本章小结 | 第51-53页 |
| 第三章 苜蓿抗氧化酶防御系统对盐渍、干旱及低温的响应机制 | 第53-71页 |
| ·材料与方法 | 第54-56页 |
| ·实验材料培养及处理 | 第54页 |
| ·测定指标及方法 | 第54-56页 |
| ·数据处理及作图 | 第56页 |
| ·结果与分析 | 第56-68页 |
| ·NaCl 胁迫对苜蓿幼苗芽、根伸长及鲜重增加的影响 | 第56-57页 |
| ·NaCl 胁迫对苜蓿幼苗芽、根H202、MDA 含量及相对质膜透性的影响.. | 第57-58页 |
| ·NaCl 胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶活性的影响 | 第58-59页 |
| ·NaCl 胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶同功酶的影响 | 第59-60页 |
| ·PEG 胁迫对苜蓿幼苗芽、根伸长及鲜重增加的影响 | 第60-61页 |
| ·PEG 胁迫对苜蓿幼苗芽、根H_2O_2、MDA 含量及相对质膜透性的影响 | 第61-62页 |
| ·PEG 胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶活性的影响 | 第62-63页 |
| ·PEG 胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶同功酶的影响 | 第63-64页 |
| ·10℃低温胁迫对苜蓿幼苗芽、根伸长及鲜重增加的影响 | 第64-65页 |
| ·10℃低温胁迫对苜蓿幼苗芽、根 H_2O_2、MDA 含量及相对质膜透性影响 | 第65-66页 |
| ·10℃低温胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶活性的影响 | 第66-67页 |
| ·10℃低温胁迫对苜蓿幼苗芽、根抗氧化保护酶同功酶的影响 | 第67-68页 |
| ·讨论 | 第68-70页 |
| ·本章小结 | 第70-71页 |
| 第四章 苜蓿遗传转化受体系统的建立 | 第71-81页 |
| ·实验材料及试剂 | 第71-72页 |
| ·实验材料 | 第71页 |
| ·主要试剂及培养基 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-73页 |
| ·种子消毒及无菌苗培养 | 第72页 |
| ·愈伤组织诱导 | 第72页 |
| ·愈伤组织分化 | 第72页 |
| ·根的诱导 | 第72-73页 |
| ·扩繁及移栽 | 第73页 |
| ·评价指标 | 第73页 |
| ·结果与分析 | 第73-78页 |
| ·不同基本培养基对愈伤诱导的影响 | 第73-74页 |
| ·不同基因型、外植体和激素配比对愈伤诱导及其生长状况的影响 | 第74-76页 |
| ·不同愈伤组织来源及培养基对愈伤组织分化的影响 | 第76-77页 |
| ·生根、扩繁及移栽 | 第77-78页 |
| ·不同培养基及激素组合下植株再生率的比较 | 第78页 |
| ·讨论 | 第78-80页 |
| ·本章小结 | 第80-81页 |
| 第五章 AtNDPK2 和codA 基因对苜蓿的转化及转基因植株的氧化胁迫耐性分析 | 第81-99页 |
| ·实验材料 | 第81-84页 |
| ·实验植物材料及转化载体 | 第81-82页 |
| ·主要抗生素溶液及培养基 | 第82-84页 |
| ·实验方法 | 第84-88页 |
| ·农杆菌菌种的保存及侵染悬浮液的制备 | 第84页 |
| ·选择培养基中头孢霉素抑菌浓度的确定 | 第84页 |
| ·头孢霉素对愈伤组织诱导和分化的影响 | 第84页 |
| ·选择培养基中卡那霉素筛选浓度的确定 | 第84页 |
| ·农杆菌侵染方式对转化的影响 | 第84-85页 |
| ·最佳共培养时间的确定 | 第85页 |
| ·农杆菌介导AtNDPK2 和codA 基因的转化及植株再生 | 第85页 |
| ·转基因植株的分子生物学鉴定 | 第85-87页 |
| ·转基因植株对MV 介导的氧化胁迫的忍耐性 | 第87-88页 |
| ·结果与分析 | 第88-95页 |
| ·头孢霉素对农杆菌EHA105 生长的影响 | 第88页 |
| ·头孢霉素对下胚轴愈伤组织诱导及其分化的影响 | 第88-89页 |
| ·选择培养基中卡那霉素选择压的确定 | 第89-90页 |
| ·农杆菌侵染方式对转化的影响 | 第90页 |
| ·共培养时间对转化的影响 | 第90页 |
| ·AtNDPK2 和codA 基因转化植株的筛选与再生 | 第90-92页 |
| ·再生植株的PCR 检测 | 第92-93页 |
| ·不同转基因植株在MV 介导氧化胁迫条件下的RT-PCR 分析 | 第93-94页 |
| ·转AtNDPK2 基因苜蓿对MV 介导的氧化胁迫的忍耐性 | 第94-95页 |
| ·转codA 基因苜蓿对MV 介导的氧化胁迫的忍耐性 | 第95页 |
| ·讨论 | 第95-98页 |
| ·抗生素的使用及遗传转化影响因素分析 | 第95-97页 |
| ·AtNDPK2 基因对苜蓿的遗传转化及其耐逆性 | 第97页 |
| ·codA 基因对苜蓿的遗传转化及其耐逆性 | 第97-98页 |
| ·本章小结 | 第98-99页 |
| 第六章 主要结果与创新点 | 第99-103页 |
| ·主要结果 | 第99-101页 |
| ·本论文的创新点 | 第101页 |
| ·进一步的研究设想 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-120页 |
| 缩略词 | 第120-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 作者简介 | 第123页 |
