| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-16页 |
| 英文缩写词表 | 第16-17页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 论文正文 | 第20-62页 |
| 第一章 体外血脑屏障模型的建立和评价 | 第20-32页 |
| 1 仪器与材料 | 第20-21页 |
| ·仪器 | 第20-21页 |
| ·试剂和材料 | 第21页 |
| 2 试验方法 | 第21-25页 |
| ·大鼠星形胶质细胞(As)的原代分离培养和鉴定 | 第21-23页 |
| ·大鼠脑微血管内皮细胞(BMEC)的培养和鉴定 | 第23-24页 |
| ·体外BBB模型的建立和评价 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25-30页 |
| ·细胞形态学观察及鉴定 | 第25-27页 |
| ·体外BBB模型的评价 | 第27-30页 |
| 4 讨论 | 第30-31页 |
| 5 结论 | 第31-32页 |
| 第二章 马钱子碱和P-糖蛋白体外亲和力研究 | 第32-41页 |
| 1 仪器与材料 | 第32-33页 |
| ·仪器 | 第32-33页 |
| ·药品与试剂 | 第33页 |
| 2 试验方法 | 第33-36页 |
| ·溶液配制 | 第33-35页 |
| ·试验分组 | 第35页 |
| ·反应孵育条件 | 第35页 |
| ·试验步骤 | 第35-36页 |
| ·数据处理 | 第36页 |
| 3 结果 | 第36-39页 |
| ·Pi浓度测定标准曲线 | 第36-37页 |
| ·时间-ATPase活性 | 第37-38页 |
| ·浓度-ATPase活性 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 第三章 P-糖蛋白对马钱子碱在体外血脑屏障转运的影响 | 第41-59页 |
| 第一部分 细胞毒性试验 | 第42-45页 |
| 1 仪器与材料 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·药品与试剂 | 第42页 |
| 2 试验方法 | 第42-43页 |
| ·MTT液的配置 | 第42-43页 |
| ·系列工作液的配制 | 第43页 |
| ·MTT试验 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-45页 |
| 第二部分 UPLC-MS/MS测定马钱子碱的浓度 | 第45-50页 |
| 1 仪器与材料 | 第45页 |
| ·仪器 | 第45页 |
| ·药品与试剂 | 第45页 |
| 2 试验方法 | 第45-47页 |
| ·溶液配制 | 第45页 |
| ·色谱条件 | 第45-46页 |
| ·质谱条件 | 第46页 |
| ·样品处理 | 第46页 |
| ·方法学考察 | 第46-47页 |
| 3 结果 | 第47-50页 |
| ·色谱-质谱行为 | 第47-48页 |
| ·标准曲线 | 第48页 |
| ·方法学考察 | 第48-50页 |
| 第三部分 马钱子碱在体外BBB模型上的双向转运 | 第50-58页 |
| 1 仪器与材料 | 第50页 |
| ·仪器 | 第50页 |
| ·药品与试剂 | 第50页 |
| 2 试验方法 | 第50-52页 |
| ·溶液配制 | 第50-51页 |
| ·试验分组 | 第51页 |
| ·Rh 123标准曲线 | 第51页 |
| ·按照第一章的方法建立体外BBB模型并进行验证 | 第51页 |
| ·药物跨膜转运试验 | 第51-52页 |
| ·样品中马钱子碱的测定 | 第52页 |
| 3 数据处理 | 第52页 |
| 4 结果 | 第52-56页 |
| ·Rh 123在体外BBB的双向转运 | 第52-54页 |
| ·马钱子碱在体外BBB的双向转运 | 第54-56页 |
| 5 讨论 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 综述 | 第62-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第75页 |