摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
第一章 引言 | 第11-16页 |
1.1 马铃薯Y病毒的研究进展 | 第11-12页 |
1.1.1 马铃薯Y病毒结构 | 第11页 |
1.1.2 马铃薯Y病毒的株系划分 | 第11-12页 |
1.2 细胞自噬 | 第12-14页 |
1.2.1 胞自噬研究进展 | 第12-13页 |
1.2.2 细胞自噬与病毒侵染之间的关系 | 第13-14页 |
1.3 过氧化物酶体自噬研究进展 | 第14-15页 |
1.4 研究目的和意义 | 第15-16页 |
第二章 细胞自噬的研究 | 第16-28页 |
2.1 实验材料 | 第16页 |
2.1.1 植物材料 | 第16页 |
2.1.2 实验所需毒株以及菌株 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-21页 |
2.2.1 RNA提取及cDNA的合成 | 第16页 |
2.2.2 细菌、农杆菌转化 | 第16页 |
2.2.3 VIGS载体构建 | 第16-18页 |
2.2.4 实时荧光定量PCR检测 | 第18-19页 |
2.2.5 PVY侵染烟草 | 第19页 |
2.2.6 细胞自噬标记蛋白ATG8的表达变化分析 | 第19-20页 |
2.2.7 电镜样品制备 | 第20-21页 |
2.2.8 激光共聚焦显微镜观察 | 第21页 |
2.3 实验结果 | 第21-27页 |
2.3.1 PVY侵染烟草后可引起胞内产生自噬小泡 | 第21-22页 |
2.3.2 PVY侵染烟草对细胞自噬标记蛋白ATG8的表达影响 | 第22-23页 |
2.3.3 抑制寄主细胞自噬对PVY侵染复制的影响 | 第23-27页 |
2.4 讨论 | 第27-28页 |
第三章 过氧化物酶体自噬的研究 | 第28-38页 |
3.1 实验材料 | 第28页 |
3.1.1 实验所需毒株以及菌株 | 第28页 |
3.1.2 植物材料 | 第28页 |
3.2 实验方法 | 第28-31页 |
3.2.1 cDNA的合成 | 第28页 |
3.2.2 含标签的融合蛋白表达载体的构建 | 第28-29页 |
3.2.3 瞬时侵染、融合蛋白的表达 | 第29-30页 |
3.2.4 电镜样品制备 | 第30-31页 |
3.2.5 石蜡切片制备 | 第31页 |
3.2.6 原生质体制备及激光共聚焦显微镜观察 | 第31页 |
3.3 实验结果 | 第31-36页 |
3.3.1 PVY侵染烟草后对过氧化物酶体结构变化的影响 | 第31-32页 |
3.3.2 PVY侵染烟草引起过氧化物酶体数目的变化 | 第32-33页 |
3.3.3 PVY侵染烟草对CAT蛋白亚细胞定位变化的影响 | 第33-34页 |
3.3.4 PVY侵染烟草引起PEX14含量的变化 | 第34页 |
3.3.5 PVY侵染烟草引起胞内ROS含量的上调 | 第34-35页 |
3.3.6 胞内ROS对细胞自噬的调控 | 第35-36页 |
3.4 讨论 | 第36-38页 |
第四章 全文结论 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-46页 |
附录 | 第46-47页 |
致谢 | 第47-48页 |
作者简历 | 第48页 |