| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第11-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-20页 |
| 1.1 DNA甲基化 | 第13-14页 |
| 1.1.1 DNA甲基化概述 | 第13页 |
| 1.1.2 DNA甲基化检测方法 | 第13-14页 |
| 1.2 精子发生 | 第14-16页 |
| 1.2.1 精子发生过程 | 第14-15页 |
| 1.2.2 减数分裂过程中的细胞形态 | 第15-16页 |
| 1.3 精子发生过程中的DNA甲基化 | 第16-19页 |
| 1.3.1 精子发生过程中的DNA甲基化 | 第16-17页 |
| 1.3.2 精子发生过程中的DNA甲基化与男性不育 | 第17页 |
| 1.3.3 DNA甲基化在牛遗传育种中的应用 | 第17-18页 |
| 1.3.4 干细胞体外诱导为生殖细胞 | 第18-19页 |
| 1.4 技术路线 | 第19页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.4 实验试剂配制 | 第21-22页 |
| 2.2 牛精子发生过程中的甲基化分析 | 第22-27页 |
| 2.2.1 精子发生过程中不同类型的单细胞获取 | 第22-23页 |
| 2.2.2 单细胞DNA甲基化分析 | 第23-27页 |
| 2.3 牛睾丸间充质干细胞体外诱导分化为生殖细胞 | 第27-31页 |
| 2.3.1 牛睾丸间充质干细胞的分离培养 | 第27页 |
| 2.3.2 牛睾丸MSCs的生物学鉴定 | 第27-30页 |
| 2.3.3 牛睾丸 MSCs 向生殖细胞诱导 | 第30-31页 |
| 第三章 研究结果 | 第31-49页 |
| 3.1 精子发生过程中不同类型的单细胞获取 | 第31页 |
| 3.2 单细胞DNA甲基化测序分析 | 第31-45页 |
| 3.2.1 测序数据质量评估 | 第31-32页 |
| 3.2.2 参考序列比对 | 第32-33页 |
| 3.2.3 甲基化位点检测及分析 | 第33-35页 |
| 3.2.4 单样本甲基化分析 | 第35-37页 |
| 3.2.5 相关性和聚类热图分析 | 第37-38页 |
| 3.2.6 比较组合甲基化水平联合作图 | 第38-40页 |
| 3.2.7 DMR分析 | 第40-42页 |
| 3.2.8 DMR相关基因GO富集分析 | 第42-43页 |
| 3.2.9 DMR相关基因 | 第43-44页 |
| 3.2.10 DMR相关基因KEGG信号通路富集分析 | 第44-45页 |
| 3.3 牛睾丸MSCs体外诱导分化为生殖细胞 | 第45-49页 |
| 3.3.1 牛睾丸MSCs的分离培养 | 第45-46页 |
| 3.3.2 牛睾丸MSCs的生物学鉴定 | 第46-48页 |
| 3.3.3 牛睾丸MSCs向生殖细胞诱导 | 第48-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-52页 |
| 4.1 单细胞WGBS分析 | 第49-50页 |
| 4.2 干细胞体外诱导为生殖细胞 | 第50-51页 |
| 4.3 今后研究计划 | 第51-52页 |
| 第五章 全文结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简历 | 第61页 |