| 中文摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-25页 |
| 1.1 研究的目的和意义 | 第11页 |
| 1.2 文献综述 | 第11-25页 |
| 1.2.1 玉米遗传转化的方法 | 第11-15页 |
| 1.2.2 玉米遗传转化的受体系统 | 第15-18页 |
| 1.2.3 玉米遗传转化的标记基因 | 第18-19页 |
| 1.2.4 玉米的抗旱研究 | 第19-24页 |
| 1.2.5 干旱对植物的影响 | 第24页 |
| 1.2.6 玉米转基因技术的展望 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-39页 |
| 2.1 基因枪法转化玉米自交系501的材料与方法 | 第25-29页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第25-29页 |
| 2.2 花粉管通道法转化zmpti1,zmpti1-1,zmcipk2蛋白激酶基因的材料与方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第29页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第29-31页 |
| 2.3 花粉管通道法转化os07g0622000基因的研究的材料与方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 试验材料 | 第31页 |
| 2.3.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 2.4 pgreen0229-os07g0622000-bar植物表达载体的构建与转化的材料与方法 | 第33-39页 |
| 2.4.1 试验材料 | 第33-34页 |
| 2.4.2 试验方法 | 第34-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-58页 |
| 3.1 基因枪法转化玉米自交系501 | 第39-44页 |
| 3.1.1 玉米501幼胚的诱导及抗性愈伤组织的筛选 | 第39页 |
| 3.1.2 抗性愈伤组织分化及再生植株的获得 | 第39-41页 |
| 3.1.3 转基因植株的pcr检测 | 第41-44页 |
| 3.2 花粉管通道法转化zmpti1,zmpti1-1,zmcipk2蛋白激酶基因 | 第44-48页 |
| 3.2.1 花粉管转化及转化植株的筛选 | 第44-45页 |
| 3.2.2 转基因植株的pcr检测 | 第45-46页 |
| 3.2.3 玉米t1代的抗旱性初步鉴定 | 第46-48页 |
| 3.3 花粉管通道法转化os07g0622000基因的研究 | 第48-52页 |
| 3.3.1 花粉管转化及转化植株的筛选 | 第48页 |
| 3.3.2 转基因植株的pcr检测 | 第48-49页 |
| 3.3.3 转基因植株的确定 | 第49页 |
| 3.3.4 转基因植株的胁迫处理 | 第49-50页 |
| 3.3.5 干旱胁迫下叶片相对含水量的变化 | 第50-51页 |
| 3.3.6 干旱胁迫下细胞膜的稳定性 | 第51-52页 |
| 3.4 pgreen0229-os07g0622000-bar表达载体的构建与转化 | 第52-58页 |
| 3.4.1 植物表达载体的构建 | 第52-56页 |
| 3.4.2 花粉管通道法转化及抗性植株的筛选 | 第56-57页 |
| 3.4.3 转基因植株的pcr检测 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-65页 |
| 4.1 基因枪法转化玉米自交系501 | 第58-61页 |
| 4.1.1 影响基因枪转化频率的因素 | 第58页 |
| 4.1.2 影响玉米组织培养的因素 | 第58-61页 |
| 4.2 花粉管通道法转化zmpti1,zmpti1-1,zmcipk2蛋白激酶基因 | 第61-62页 |
| 4.2.1 zmpti1,zmpti1-1,zmcipk2蛋白激酶基因 | 第61页 |
| 4.2.2 花粉管通道法转化玉米的方法 | 第61-62页 |
| 4.2.3 转基因玉米耐旱性的鉴定 | 第62页 |
| 4.3 花粉管通道法转化os07g0622000基因的研究 | 第62-63页 |
| 4.3.1 os07g0622000基因 | 第62-63页 |
| 4.3.2 干旱胁迫对玉米叶片相对含水量和细胞离子渗漏率的影响 | 第63页 |
| 4.4 pgreen0229-os07g0622000-bar表达载体的构建与转化 | 第63-65页 |
| 4.4.1 植物表达载体的构建 | 第63-64页 |
| 4.4.2 转基因玉米标记基因 | 第64-65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 附录 | 第75-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第82页 |
