摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
引言 | 第13-19页 |
第一章 RAGE基因敲除对重症中暑小鼠急性肺损伤的保护作用 | 第19-27页 |
1.1 材料 | 第19-20页 |
1.1.1 实验材料与主要试剂 | 第19页 |
1.1.2 主要溶液配置 | 第19页 |
1.1.3 主要实验仪器及设备 | 第19-20页 |
1.2 实验方法 | 第20-22页 |
1.2.1 实验动物分组及处理 | 第20页 |
1.2.2 肺泡灌洗液的采集 | 第20页 |
1.2.3 BALF中白细胞计数、中性粒细胞计数及蛋白含量的测定 | 第20-21页 |
1.2.4 肺湿/干重比值及肺含水量的测定 | 第21页 |
1.2.5 肺组织病理学观察 | 第21页 |
1.2.6 肺组织的电镜检查 | 第21-22页 |
1.2.7 心脏取血 | 第22页 |
1.2.8 统计学处理 | 第22页 |
1.3 实验结果 | 第22-25页 |
1.3.1 各组小鼠BALF中白细胞计数、中性粒细胞计数及蛋白含量的比较 | 第22页 |
1.3.2 各组小鼠肺湿/干重比值及肺含水量的比较 | 第22-23页 |
1.3.3 各组小鼠肺组织病理学改变 | 第23-24页 |
1.3.4 各组小鼠电镜下肺组织超微结构的改变 | 第24页 |
1.3.5 各组小鼠动脉血氧分压、二氧化碳分压及PH值的比较 | 第24-25页 |
1.4 讨论 | 第25-27页 |
第二章 RAGE在热打击引起内皮细胞屏障功能障碍中的作用及其信号转导通路 | 第27-60页 |
2.1 材料 | 第27-29页 |
2.1.1 实验材料与主要试剂 | 第27-28页 |
2.1.2 主要溶液配置 | 第28-29页 |
2.1.3 主要实验仪器及设备 | 第29页 |
2.2 实验方法 | 第29-35页 |
2.2.1 人脐静脉内皮细胞株HUVEC的培养 | 第29-30页 |
2.2.2 单层HUVEC通透性的测定 | 第30-31页 |
2.2.3 Western blot检测 | 第31-32页 |
2.2.4 总RNA提取和RT-PCR反应 | 第32-33页 |
2.2.5 RAGE siRNA干扰 | 第33页 |
2.2.6 腺病毒转染 | 第33-34页 |
2.2.7 染色质免疫共沉淀 | 第34-35页 |
2.2.8 统计学处理 | 第35页 |
2.3 实验方案设计 | 第35-39页 |
2.3.1 RAGE在热打击引起内皮细胞屏障功能障碍中的作用 | 第35-37页 |
2.3.2 MAPK信号通路在RAGE介导的热打击引起HUVEC通透性变化中的作用 | 第37-38页 |
2.3.3 HSF1、c-Jun在介导热打击引起RAGE蛋白表达变化中的作用 | 第38-39页 |
2.4 实验结果 | 第39-55页 |
2.4.1 RAGE在热打击引起内皮细胞屏障功能障碍中的作用 | 第39-45页 |
2.4.2 MAPK信号通路在RAGE介导的热打击引起HUVEC通透性变化中的作用 | 第45-51页 |
2.4.3 HSF1、c-Jun在介导热打击引起RAGE蛋白表达变化中的作用 | 第51-55页 |
2.5 讨论 | 第55-60页 |
结语 | 第60-61页 |
1 结论 | 第60页 |
2 创新点 | 第60页 |
3 展望 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-65页 |
附录 | 第65-66页 |
在校期间发表论文情况 | 第66-67页 |
致谢 | 第67页 |