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Wnt2蛋白与人间充质干细胞体外衰老相关性的探索分析

英文缩略词第4-5页
摘要第5-7页
Abstract第7-8页
1 前言第9-13页
2 实验材料和方法第13-33页
    2.1 实验材料第13-18页
        2.1.1 材料第13-15页
        2.1.2 主要仪器第15-16页
        2.1.3 常用溶液配制第16-17页
        2.1.4 主要生物软件和分析工具第17-18页
    2.2 实验方法第18-33页
        2.2.1 细胞的冻存与复苏第18页
        2.2.2 细胞传代培养第18-19页
        2.2.3 RealTime-PCR第19-21页
        2.2.4 细胞核质分离第21-22页
        2.2.5 Westernblot第22-25页
        2.2.6 ELISA第25-26页
        2.2.7 载体构建第26-31页
        2.2.8 建立hMSCsH2O2衰老模型第31-33页
3 实验结果第33-58页
    3.1 Wnt家族因子在hMSCs复制衰老过程中的表达情况分析第33-46页
        3.1.1 不同来源的hMSCs中检测不同Wnt家族基因的表达情况第33-36页
        3.1.2 hUC1-MSCs标准细胞株中不同代次的Wnt家族基因的表达情况分析第36-38页
        3.1.3 Real Time-PCR法检测不同来源不同代次的hMSCs中Wnt2基因的表达第38-42页
        3.1.4 不同来源不同代次的hMSCs中Wnt2蛋白的表达第42-46页
    3.2 Wnt2在Wnt/β-catenin经典信号通路中的作用第46-52页
        3.2.1 Wnt2作用激活Wnt经典信号下游转录因子靶基因TCF1的表达第46-48页
        3.2.2 Wnt2作用激活Wnt经典信号下游靶基因WISP1的表达第48-50页
        3.2.3 hMSCs中Wnt2诱导的Wnt经典信号通路β-catenin的入核第50-52页
    3.3 Wnt2在hMSCsH2O2衰老模型中的分子机制研究第52-58页
        3.3.1 hMSCsH2O2衰老模型的建立第52-53页
        3.3.2 hMSCsH2O2衰老模型中β-catenin的变化第53-54页
        3.3.3 hMSCsH2O2衰老模型中Wnt2和GSK-3β随衰老的变化第54-56页
        3.3.4 GSK-3β抑制剂CHIR99021促进hMSCs中Wnt2的表达第56-58页
4 讨论第58-60页
5 结论第60-61页
参考文献第61-66页
综述第66-80页
    参考文献第75-80页
致谢第80-82页

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