| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 英汉缩略语名词对照 | 第10-11页 |
| 第一部分 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 光动力学疗法 | 第11-12页 |
| 1.2 活性氧对细菌的破坏作用 | 第12-13页 |
| 1.3 光敏剂的分类 | 第13页 |
| 1.4 酞菁类光敏剂 | 第13-14页 |
| 1.5 光动力抗菌疗法的优点 | 第14-15页 |
| 1.6 光敏剂抗菌研究现状 | 第15页 |
| 1.7 本课题研究意义 | 第15页 |
| 1.8 展望 | 第15-17页 |
| 第二部分 光敏剂构效关系对抗菌效果的影响 | 第17-32页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第17-23页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.2 常用培养基和缓冲液 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验菌株 | 第19页 |
| 2.1.4 光敏剂的合成和表征 | 第19-21页 |
| 2.1.5 细菌对光敏剂吸附动力学的测定 | 第21页 |
| 2.1.6 抗菌活力的测定 | 第21页 |
| 2.1.7 细菌对光敏剂吸附量的测定 | 第21-22页 |
| 2.1.8 菌体表面疏水性的测定 | 第22-23页 |
| 2.1.9 菌体表面动态电位的测定 | 第23页 |
| 2.1.10 光敏剂吸收光谱和荧光光谱测定 | 第23页 |
| 2.1.11 数据分析软件 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.2.1 光敏剂的表征 | 第23-24页 |
| 2.2.2 大肠杆菌对光敏剂的吸附动力学测定结果 | 第24-25页 |
| 2.2.3 光敏剂ZnPc(Lys)_5具有最强的抗菌效果 | 第25页 |
| 2.2.4 光敏剂被菌体吸附的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.5 光敏剂对菌体表面疏水性的影响 | 第26-27页 |
| 2.2.6 光敏剂对菌体表面动态电位的影响 | 第27页 |
| 2.2.7 光敏剂ZnPc(Lys)_5在菌体表面具有最高的解聚率 | 第27-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-32页 |
| 第三部分 五聚赖氨酸酞菁锌抗菌机理的研究 | 第32-45页 |
| 3.1 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.1.1 实验药品 | 第32页 |
| 3.1.2 实验菌株 | 第32-33页 |
| 3.1.3 原生质体的制备 | 第33页 |
| 3.1.4 细菌对光敏剂吸附动力学的测定 | 第33页 |
| 3.1.5 抗菌活力的测定 | 第33页 |
| 3.1.6 细菌对光敏剂吸附量的测定 | 第33-34页 |
| 3.1.7 电动电位测定 | 第34页 |
| 3.1.8 细菌细胞壁完整性受光敏剂影响的测定 | 第34页 |
| 3.1.9 菌体膜渗透性的测定 | 第34页 |
| 3.1.10 基因表达的RT-qPCR分析 | 第34-35页 |
| 3.1.11 单用抗菌剂时最低抑菌浓度的测定 | 第35页 |
| 3.1.12 抗菌剂联合抑菌效果的评价 | 第35-36页 |
| 3.2 结果与分析 | 第36-43页 |
| 3.2.1 细菌对光敏剂吸附动力学结果 | 第36页 |
| 3.2.2 抗菌活性的测定结果 | 第36-37页 |
| 3.2.3 细菌对光敏剂吸附量测定结果 | 第37页 |
| 3.2.4 光敏剂增加细菌表面电荷数 | 第37-38页 |
| 3.2.5 光敏剂对菌体细胞壁完整性的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.6 光敏剂ZnPc(Lys)_5在细胞壁和细胞膜上的分布 | 第39-40页 |
| 3.2.7 光敏剂对细胞膜渗透性的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.8 光动力效应对细菌基因表达的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.9 抗菌剂单用抑菌效果 | 第42页 |
| 3.2.10 抗菌剂联合抑菌效果 | 第42-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-45页 |
| 全文结论与展望 | 第45-46页 |
| 本文创新点 | 第46-47页 |
| 硕士期间所发文章 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
