| 摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 英文缩写略表中英文注释表 | 第11-17页 |
| 绪论 | 第17-22页 |
| 1.1 胃癌概述 | 第17-18页 |
| 1.1.1 胃癌与幽门螺杆菌 | 第17-18页 |
| 1.1.2 胃癌与遗传性、家族聚集性 | 第18页 |
| 1.1.3 胃癌与饮食、不良的生活习惯 | 第18页 |
| 1.2 EMT与肿瘤 | 第18-19页 |
| 1.2.1 EMT的概念 | 第18-19页 |
| 1.2.2 EMT与肿瘤 | 第19页 |
| 1.2.3 EMT与胃癌 | 第19页 |
| 1.3 细胞凋亡与肿瘤 | 第19页 |
| 1.4 ABL2与疾病 | 第19-22页 |
| 1.4.1 ABL2与肝细胞癌 | 第20页 |
| 1.4.2 ABL2与原发性黑色素瘤 | 第20页 |
| 1.4.3 ABL2与乳腺癌 | 第20-21页 |
| 1.4.4 ABL2与其他疾病 | 第21-22页 |
| 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第22-26页 |
| 2.1 研究目的 | 第22页 |
| 2.2 实验研究方法 | 第22-23页 |
| 2.3 实验设计方案 | 第23-25页 |
| 2.4 研究意义 | 第25-26页 |
| 数据库分析及ABL2在人胃癌组织中表达差异的检测 | 第26-38页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第26-28页 |
| 3.1.1 数据库公共数据分析 | 第26页 |
| 3.1.2 标本采集 | 第26-27页 |
| 3.1.3 主要试剂及配置 | 第27-28页 |
| 3.1.4 主要仪器、耗材 | 第28页 |
| 3.2 方法 | 第28-33页 |
| 3.2.1 组织标本中总RNA提取 | 第28-29页 |
| 3.2.2 RNA逆转录 | 第29-30页 |
| 3.2.3 荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 3.2.4 免疫组织化学染色技术 | 第31-33页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第33页 |
| 3.3 结果 | 第33-36页 |
| 3.3.1 ONCOMINE数据库分析ABL2mRNA水平在临床组织中的表达情况 | 第33页 |
| 3.3.2 ABL2表达情况与患者预后的关系 | 第33-35页 |
| 3.3.3 ABL2在人胃癌组织中的表达 | 第35-36页 |
| 3.3.4 ABL2mRNA在胃癌组织及相应的癌旁组织中的表达情况 | 第36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| RNAi抑制ABL2表达对胃肿瘤细胞生物学行为的影响 | 第38-59页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第38-41页 |
| 4.1.1 细胞 | 第38页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第38-39页 |
| 4.1.3 主要仪器及耗材 | 第39-40页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第40-41页 |
| 4.2 方法 | 第41-46页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第41-42页 |
| 4.2.2 慢病毒感染细胞 | 第42-43页 |
| 4.2.3 Westernblotting | 第43-44页 |
| 4.2.4 细胞划痕迁移实验 | 第44页 |
| 4.2.5 Transwell迁移实验 | 第44-45页 |
| 4.2.6 平板克隆形成实验 | 第45页 |
| 4.2.7 CCK-8细胞增殖实验 | 第45页 |
| 4.2.8 裸鼠皮下移植瘤接种实验 | 第45-46页 |
| 4.2.9 结果统计 | 第46页 |
| 4.3 结果 | 第46-57页 |
| 4.3.1 ABL2在胃上皮细胞及胃癌细胞系中的表达差异 | 第46-47页 |
| 4.3.2 稳定低表达ABL2的MGC-803细胞株的建立 | 第47-49页 |
| 4.3.3 ABL2低表达抑制MGC-803细胞的迁移能力 | 第49-50页 |
| 4.3.4 MGC-803细胞中敲减ABL2抑制细胞的增殖能力 | 第50-51页 |
| 4.3.5 敲减ABL2后体外抑制胃癌细胞发生EMT及侵袭转移 | 第51-52页 |
| 4.3.6 ABL2低表达时能够促进细胞凋亡的发生 | 第52-53页 |
| 4.3.7 ABL2低表达对TGF-β/SMAD及Hippo信号通路相关蛋白的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.8 ABL2敲减后抑制裸鼠皮下移植瘤的生长 | 第54-57页 |
| 4.4 讨论 | 第57-59页 |
| 体外上调ABL2表达后对胃癌细胞生物学行为的影响 | 第59-69页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第59页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第59页 |
| 5.1.2 主要溶液配制 | 第59页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第59页 |
| 5.2 方法 | 第59-61页 |
| 5.2.1 细胞培养 | 第60页 |
| 5.2.2 慢病毒感染细胞 | 第60页 |
| 5.2.3 Westernblotting | 第60页 |
| 5.2.4 细胞划痕迁移实验 | 第60页 |
| 5.2.5 Transwell迁移实验 | 第60页 |
| 5.2.6 平板克隆形成实验 | 第60页 |
| 5.2.7 CCK-8细胞增殖实验 | 第60页 |
| 5.2.8 统计分析 | 第60-61页 |
| 5.3 结果 | 第61-67页 |
| 5.3.1 稳定高表达ABL2的BGC-823胃癌细胞株的建立 | 第61-62页 |
| 5.3.2 ABL2过表达促进BGC-823细胞的转移 | 第62-63页 |
| 5.3.3 ABL2过表达促进BGC-823细胞的增殖 | 第63-64页 |
| 5.3.4 体外过表达ABL2促进EMT过程的发生、上调转移增殖相关指标 | 第64-65页 |
| 5.3.5 ABL2过表达抑制细胞凋亡的发生 | 第65-67页 |
| 5.3.6 ABL2与TGF-β/SMAD、Hippo信号通路的关系 | 第67页 |
| 5.4 讨论 | 第67-69页 |
| 结论与展望 | 第69-71页 |
| 一.结论 | 第69页 |
| 二.工作展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第77页 |
