| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略语英汉对照表 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-37页 |
| 1 高等植物对非生物胁迫的响应机制 | 第13-21页 |
| 1.1 渗透物质积累和离子平衡维护 | 第13-16页 |
| 1.2 活性氧清除 | 第16-18页 |
| 1.3 非生物胁迫下表观遗传调节 | 第18-19页 |
| 1.4 植物激素ABA在非生物应答中的作用 | 第19-21页 |
| 2 转录因子在植物生长发育和非生物胁迫应答中的研究进展 | 第21-27页 |
| 2.1 转录因子的主要结构及研究方法 | 第21-23页 |
| 2.2 植物转录因子的分类和主要功能 | 第23-27页 |
| 3 TFⅢA型锌指蛋白在植物生长发育和非生物胁迫应答中的研究进展 | 第27-35页 |
| 3.1 TFⅢA型锌指蛋白的结构 | 第27-30页 |
| 3.2 TFⅢA型锌指蛋白的功能 | 第30-35页 |
| 4 小结 | 第35-37页 |
| 第二章 锌指蛋白ZFP150在水稻非生物胁迫应答中的功能分析 | 第37-79页 |
| 1 试验材料和方法 | 第38-49页 |
| 1.1 植物材料和种植 | 第38页 |
| 1.2 菌株、载体和试剂盒 | 第38-39页 |
| 1.3 植物材料的处理 | 第39页 |
| 1.4 植物总DNA提取 | 第39-40页 |
| 1.5 植物总RNA提取和cDNA第一链的合成 | 第40页 |
| 1.6 Quantitative Real-time PCR分析 | 第40页 |
| 1.7 ZFP150_(pro)::GUS转基因水稻获得及GUS染色分析 | 第40-41页 |
| 1.8 ZFP150亚细胞定位分析 | 第41-43页 |
| 1.9 ZFP150转录活性分析 | 第43-44页 |
| 1.10 ZFP150过量表达和RNAi转基因植株的获得和鉴定 | 第44-45页 |
| 1.11 细胞大小分析 | 第45-46页 |
| 1.12 ZFP150转基因植株耐逆性鉴定 | 第46-47页 |
| 1.13 酵母双杂交筛选互作蛋白 | 第47-49页 |
| 1.14 双分子荧光互补(BiFC)分析 | 第49页 |
| 2 结果和分析 | 第49-74页 |
| 2.1 ZFP150序列分析 | 第49-50页 |
| 2.2 ZFP150在水稻中的表达特性 | 第50-52页 |
| 2.3 ZFP150_(pro)::GUS报告基因转基因水稻植株的获得及GUS染色 | 第52-53页 |
| 2.4 ZFP150亚细胞定位分析 | 第53-54页 |
| 2.5 ZFP150转录活性分析 | 第54-55页 |
| 2.6 ZFP150过量表达和RNAi转基因水稻的获得和鉴定 | 第55-57页 |
| 2.7 ZFP150转基因水稻农艺性状考察 | 第57-60页 |
| 2.8 透明化法观察细胞大小 | 第60页 |
| 2.9 ZFP150转基因水稻耐逆性鉴定 | 第60-65页 |
| 2.10 ZFP150转基因水稻对外源植物激素的响应 | 第65-67页 |
| 2.11 酵母双杂交筛选ZFP150互作蛋白 | 第67-70页 |
| 2.12 BiFC分析ZFP150与E47体内互作 | 第70-72页 |
| 2.13 ZFP150互作蛋白E47功能分析 | 第72-74页 |
| 3 讨论 | 第74-79页 |
| 3.1 ZFP150的互作蛋白 | 第74-75页 |
| 3.2 ZFP150参与胁迫应答机制 | 第75-77页 |
| 3.3 ZFP150参与水稻生长调控 | 第77-79页 |
| 第三章 锌指蛋白ZFP214在水稻非生物胁迫应答中的功能分析 | 第79-105页 |
| 1 试验材料和方法 | 第80-86页 |
| 1.1 植物材料和种植 | 第80页 |
| 1.2 菌株、载体和试剂盒 | 第80页 |
| 1.3 植物材料的处理 | 第80页 |
| 1.4 植物总DNA提取 | 第80页 |
| 1.5 植物总RNA提取和cDNA第一链的合成 | 第80-81页 |
| 1.6 Quantitative Real-time PCR分析 | 第81页 |
| 1.7 ZFP214亚细胞定位分析 | 第81-83页 |
| 1.8 ZFP214转录活性分析 | 第83页 |
| 1.9 ZFP214转基因水稻植株的获得和鉴定 | 第83-84页 |
| 1.10 ZFP214转基因植株耐逆性鉴定 | 第84-86页 |
| 2 试验结果和分析 | 第86-101页 |
| 2.1 ZFP214表达模式 | 第86-88页 |
| 2.2 ZFP214亚细胞定位 | 第88页 |
| 2.3 ZFP214转录活性分析 | 第88-90页 |
| 2.4 ZFP214转基因水稻植株的获得和鉴定 | 第90-92页 |
| 2.5 ZFP214转基因水稻农艺性状考察 | 第92-95页 |
| 2.6 ZFP214转基因水稻耐旱性分析 | 第95-98页 |
| 2.7 酵母双杂交筛选ZFP214互作蛋白 | 第98-101页 |
| 3 讨论 | 第101-105页 |
| 3.1 ZFP214的转录活性 | 第101页 |
| 3.2 启动子分析和激素响应 | 第101-102页 |
| 3.3 ZFP214调控水稻非生物响应机制 | 第102-103页 |
| 3.4 互作蛋白鉴定 | 第103-105页 |
| 第四章 水稻膜蛋白SALP1在盐胁迫中的功能研究 | 第105-115页 |
| 1 试验材料和方法 | 第106-107页 |
| 1.1 植物材料和种植 | 第106页 |
| 1.2 菌株、载体和试剂盒 | 第106页 |
| 1.3 植物材料的处理 | 第106页 |
| 1.4 植物总RNA提取和cDNA第一链的合成 | 第106页 |
| 1.5 Quantitative Real-time PCR分析 | 第106页 |
| 1.6 亚细胞定位分析 | 第106页 |
| 1.7 SALP1过量表达转基因水稻株系的获得和鉴定 | 第106-107页 |
| 1.8 SALP1转基因水稻耐盐性和对外源ABA敏感性分析 | 第107页 |
| 2 结果和分析 | 第107-114页 |
| 2.1 SALP1序列分析和亚细胞定位 | 第107-109页 |
| 2.2 SALP1启动子分析 | 第109页 |
| 2.3 SALP1表达特性 | 第109-111页 |
| 2.4 过量表达SALP1能提高水稻幼苗耐盐性 | 第111-113页 |
| 2.5 过量表达SALP1降低水稻幼苗对外源ABA敏感性 | 第113-114页 |
| 3 讨论 | 第114-115页 |
| 全文结论 | 第115-117页 |
| 全文创新点 | 第117-119页 |
| 附录 | 第119-125页 |
| 参考文献 | 第125-143页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第143-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
