| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第13-18页 |
| 1.1 土壤盐碱化概述 | 第13-14页 |
| 1.2 植物根际促生菌概念及种类 | 第14页 |
| 1.3 植物根际促生菌的作用机制 | 第14-18页 |
| 1.3.1 活化并促进植物对营养元素的吸收 | 第14-16页 |
| 1.3.2 分泌生长促进物刺激调节植物生长 | 第16-17页 |
| 1.3.3 生物防治间接促进植物生长 | 第17-18页 |
| 1.4 PGPR提高植物耐盐性的研究进展 | 第18页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-24页 |
| 2.1.1 实验样品的采集 | 第18-19页 |
| 2.1.2 供试种子 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂与试剂盒 | 第19页 |
| 2.1.4 序列分析的软件和工具 | 第19页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.6 培养基配方 | 第20-22页 |
| 2.1.7 主要试剂的配制 | 第22-24页 |
| 2.1.8 PCR扩增产物 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-29页 |
| 2.2.1 PGPR的分离、纯化及鉴定 | 第24-25页 |
| 2.2.2 菌株功能特性的分析 | 第25-27页 |
| 2.2.3 筛选促进盐胁迫下小麦种子发芽的菌株 | 第27-28页 |
| 2.2.4 盐胁迫下单株PGPR对盆栽试验中小麦幼苗的促生效果 | 第28页 |
| 2.2.5 盐胁迫下复合PGPR对盆栽试验中小麦幼苗的促生效果 | 第28-29页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-55页 |
| 3.1 PGPR的分离、纯化 | 第29-30页 |
| 3.2 16S rRNA基因序列分析及其来源菌株初步分类鉴定 | 第30-32页 |
| 3.3 PGPR功能特性的分析 | 第32-33页 |
| 3.4 筛选促进盐胁迫下小麦种子发芽的菌株 | 第33-37页 |
| 3.4.1 在非盐胁迫下促进小麦种子发芽的PGPR的筛选 | 第33-36页 |
| 3.4.2 在盐胁迫下促进小麦种子发芽的PGPR的筛选 | 第36-37页 |
| 3.5 8株单菌对盐胁迫下小麦促生效果分析 | 第37-45页 |
| 3.5.1 单菌对盐胁迫下小麦株高的影响 | 第38页 |
| 3.5.2 单菌对盐胁迫下小麦干重的影响 | 第38-41页 |
| 3.5.3 单菌对盐胁迫下小麦根际土理化性质的影响 | 第41-45页 |
| 3.6 复合PGPR对盐胁迫下小麦促生效果分析 | 第45-55页 |
| 3.6.1 菌株的筛选 | 第45-46页 |
| 3.6.2 复合PGPR对盐胁迫下小麦促生效果分析 | 第46-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 4.1 荒漠植物根际土中PGPR的类群及促生特性 | 第55-56页 |
| 4.2 PGPR对盐胁迫下小麦生长性状的影响 | 第56-58页 |
| 4.3 PGPR对盐胁迫下小麦根际土壤理化性质的影响 | 第58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
