缩略语表 | 第10-11页 |
摘要 | 第11-13页 |
Abstract | 第13-15页 |
第一部分 前言 | 第16-36页 |
1.正常皮肤结构 | 第16-17页 |
2.皮肤创伤 | 第17-21页 |
2.1 难愈合性皮肤创伤 | 第18-19页 |
2.2 难愈合性损伤局部分子生物学表现 | 第19-20页 |
2.3 皮肤难愈合性损伤治疗的研究进展 | 第20-21页 |
3.皮肤创伤的治疗 | 第21-25页 |
3.1 创伤敷料研究进展 | 第21-22页 |
3.2 创伤愈合相关天然活性药物 | 第22-25页 |
4.药物缓释体系研究进展 | 第25-33页 |
4.1 药物分子纳米化研究现状 | 第25-27页 |
4.2 可控药物释放 | 第27-31页 |
4.3 温敏水凝胶 | 第31-33页 |
5.课题设计 | 第33-36页 |
第二部分 姜黄素纳米颗粒的制备及表征 | 第36-58页 |
引言 | 第36页 |
第一章 姜黄素纳米颗粒的理化性质 | 第36-42页 |
1.材料与方法 | 第36-38页 |
1.1 所用试剂 | 第36-37页 |
1.2 实验仪器 | 第37页 |
1.3 实验方法 | 第37-38页 |
1.3.1 姜黄素浓度标准曲线绘制 | 第37页 |
1.3.2 姜黄素纳米颗粒制备 | 第37页 |
1.3.3 姜黄素纳米分子扫描电子显微镜表征 | 第37-38页 |
1.3.4 荧光光谱扫描 | 第38页 |
1.3.5 姜黄素水溶液和姜黄素纳米颗粒水溶液大体形态 | 第38页 |
1.3.6 姜黄素水溶液和姜黄素纳米颗粒水溶液紫外线下荧光形态 | 第38页 |
2.结果 | 第38-41页 |
2.1 姜黄素标准曲线 | 第38-39页 |
2.2 姜黄素纳米颗粒微观形态 | 第39页 |
2.3 姜黄素纳米颗粒溶液形态改变 | 第39-40页 |
2.4 姜黄素纳米颗粒荧光性质改变 | 第40-41页 |
3.讨论 | 第41页 |
4.小结 | 第41-42页 |
第二章 姜黄素纳米颗粒的生物学性质 | 第42-58页 |
1.材料与方法 | 第42-47页 |
1.1 所用试剂 | 第42-43页 |
1.2 实验仪器 | 第43页 |
1.3 实验方法 | 第43-47页 |
1.3.1 细胞复苏 | 第43页 |
1.3.2 细胞传代 | 第43-44页 |
1.3.3 细胞冻存 | 第44页 |
1.3.4 姜黄素和姜黄素纳米颗粒对BJ和HaCaT细胞存活率的影响 | 第44-45页 |
1.3.5 BJ和HaCaT细胞姜黄素内吞实验 | 第45页 |
1.3.6 过氧化氢对BJ和细胞的毒性 | 第45-46页 |
1.3.7 姜黄素抵抗过氧化氢对BJ和HaCaT细胞的氧化毒性作用 | 第46页 |
1.3.8 细胞内cellROX和mBCL测定 | 第46页 |
1.3.9 还原型GSH标准曲线绘制 | 第46-47页 |
1.3.10 还原型GSH测试 | 第47页 |
2.结果 | 第47-54页 |
2.1 姜黄素纳米分子对BJ和HaCaT细胞存活率的影响 | 第47-49页 |
2.2 BJ和HaCaT细胞对姜黄素的内吞作用 | 第49-50页 |
2.3 姜黄素分子对过氧化氢对细胞的氧化损伤的拮抗作用 | 第50-52页 |
2.4 姜黄素对过氧化氢处理的细胞内ROS和GSH含量的影响 | 第52-53页 |
2.5 经姜黄素处理后的细胞细胞内GSH浓度 | 第53-54页 |
3.讨论 | 第54-56页 |
4.小结 | 第56-58页 |
第三部分 载药明胶微球的制备与表征 | 第58-80页 |
引言 | 第58页 |
第一章 明胶微球的理化性质 | 第58-66页 |
1.材料与方法 | 第58-61页 |
1.1 所用试剂 | 第58-59页 |
1.2 实验仪器 | 第59页 |
1.3 实验方法 | 第59-61页 |
1.3.1 空白明胶微球的获得 | 第59页 |
1.3.2 明胶微球粒径分析 | 第59页 |
1.3.3 搭载姜黄素纳米颗粒的明胶微球的制备 | 第59-60页 |
1.3.4 搭载姜黄素纳米颗粒的明胶微球粒径分析 | 第60页 |
1.3.5 CNPs@GMs姜黄素载药量和包封率分析 | 第60页 |
1.3.6 CNPs@GMs对MMP9的响应性测试 | 第60-61页 |
1.3.7 CNPs@GMs中姜黄素随时间释放量 | 第61页 |
2.结果 | 第61-65页 |
2.1 明胶微球形态和粒径 | 第61-62页 |
2.2 CNPs@GMs形态和粒径 | 第62-63页 |
2.3 CNPs@GMs的载药量和包封率 | 第63页 |
2.4 CNPs@GMs对MMP9的响应性 | 第63-64页 |
2.5 CNPs@GMs在MMP9作用下随时间药物释放率 | 第64-65页 |
3.讨论 | 第65-66页 |
4.小结 | 第66页 |
第二章 姜黄素明胶微球的生物学性质 | 第66-80页 |
1.材料与方法 | 第66-71页 |
1.1 所用试剂 | 第66-67页 |
1.2 实验仪器 | 第67-68页 |
1.3 实验方法 | 第68-71页 |
1.3.1 CNPs@GMs和CNPs@GMs+MMP9对BJ和HaCaT细胞存活率的影响 | 第68页 |
1.3.2 CNPs@GMs和CNPs@GMs+MMP9抵抗过氧化氢对BJ和HaCaT细胞的氧化毒性作用 | 第68-69页 |
1.3.3 AnexinⅤ/PI法检测CNPs@GMs对BJ和HaCaT对细胞凋亡的效应 | 第69页 |
1.3.4 细胞内cellROX和mBCL测定 | 第69-70页 |
1.3.5 还原型GSH含量测试 | 第70页 |
1.3.6 实时无标记细胞分析仪检测CNPs@GMs对BJ和HaCaT细胞迁移影响 | 第70页 |
1.3.7 细胞划痕实验检测CNPs@GMs对BJ的促迁移作用 | 第70-71页 |
2.结果 | 第71-76页 |
2.1 姜黄素明胶微球对BJ和HaCaT细胞存活率的影响 | 第71-72页 |
2.2 CNPs@GMs抗细胞氧化损伤作用 | 第72页 |
2.3 姜黄素明胶微球促进BJ和HaCaT细胞凋亡 | 第72-74页 |
2.4 CNPs@GMs对过氧化氢处理的细胞内ROS和GSH含量的影响 | 第74页 |
2.5 CNPs@GMs对氧化细胞损伤的BJ和HaCaT细胞中的GSH水平的影响 | 第74-75页 |
2.6 CNPs@GMs促进BJ和HaCaT细胞迁移 | 第75-76页 |
3.讨论 | 第76-77页 |
4.小结 | 第77-80页 |
第四部分 温敏水凝胶的制备及生物学性质 | 第80-86页 |
引言 | 第80页 |
1.材料与方法 | 第80-82页 |
1.1 所用试剂 | 第80-81页 |
1.2 实验仪器 | 第81页 |
1.3 实验方法 | 第81-82页 |
1.3.1 不同浓度普朗尼克F127相变温度测定 | 第81页 |
1.3.2 不同浓度普朗尼克F127和F68复合物相变温度测试 | 第81页 |
1.3.3 普朗尼克F127-F68复合姜黄素明胶微球相变温度测试 | 第81-82页 |
1.3.4 普朗尼克F127和F68细胞毒性测试 | 第82页 |
2.结果 | 第82-85页 |
2.1 温敏水凝胶相变温度 | 第82-84页 |
2.2 温敏水凝胶对BJ和HaCaT细胞的细胞毒性 | 第84-85页 |
3.讨论 | 第85页 |
4.小结 | 第85-86页 |
第五部分 CNPs@GMs温敏水凝胶促进糖尿病小鼠创伤愈合 | 第86-98页 |
引言 | 第86页 |
1.材料与方法 | 第86-90页 |
1.1 所用试剂 | 第86-87页 |
1.2 实验仪器 | 第87页 |
1.3 实验方法 | 第87-90页 |
1.3.1 糖尿病小鼠模型构建 | 第87-88页 |
1.3.2 糖尿病小鼠全层皮肤创伤模型及创伤愈合 | 第88页 |
1.3.3 皮肤创伤组织切片 | 第88页 |
1.3.4 HE染色 | 第88页 |
1.3.5 Masson三色法染色 | 第88-89页 |
1.3.6 CD31,Ki67和MMP9免疫组化染色 | 第89-90页 |
2.结果 | 第90-95页 |
2.1 糖尿小鼠模型体重和血糖 | 第90页 |
2.2 糖尿病全层皮肤创伤模型伤口愈合面积 | 第90-92页 |
2.3 HE染色创口组织微观形态表现 | 第92-93页 |
2.4 创口胶原蛋白表达 | 第93-94页 |
2.5 创口CD31,ki67和MMP9分布 | 第94-95页 |
3.讨论 | 第95-96页 |
4.小结 | 第96-98页 |
第六部分 结论 | 第98-100页 |
参考文献 | 第100-124页 |
作者在学期间取得的学术成果 | 第124-126页 |
主要简历 | 第126-128页 |
致谢 | 第128页 |