| 致谢 | 第5-7页 |
| 缩略词中英文对照表 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 1. 引言 | 第21-26页 |
| 1.1 研究背景 | 第21-23页 |
| 1.2 研究目的 | 第23页 |
| 1.3 研究方案 | 第23-26页 |
| 2. 实验材料与方法 | 第26-46页 |
| 2.1 细胞及组织基因mRNA水平检测 | 第26-28页 |
| 2.1.1 实验药物 | 第26页 |
| 2.1.2 细胞及组织RNA提取 | 第26页 |
| 2.1.3 RNA反转录为cDNA | 第26-28页 |
| 2.2 细胞及组织蛋白水平检测 | 第28-33页 |
| 2.2.1 细胞及组织蛋白样本制备 | 第28-30页 |
| 2.2.2 蛋白水平检测 | 第30-33页 |
| 2.3 动物实验 | 第33-36页 |
| 2.3.1 小鼠基因型鉴定 | 第33-35页 |
| 2.3.2 动物饲料 | 第35页 |
| 2.3.3 动物处理 | 第35-36页 |
| 2.4 铁代谢相关指标的检测 | 第36-38页 |
| 2.4.1 血清铁及转铁蛋白饱和度指标检测 | 第36-37页 |
| 2.4.2 组织非血红素铁含量测定 | 第37-38页 |
| 2.5 小鼠肝脏实质细胞的分离与培养 | 第38-40页 |
| 2.5.1 灌流缓冲液配制 | 第38-39页 |
| 2.5.2 肝脏灌流 | 第39页 |
| 2.5.3 分离肝实质细胞 | 第39-40页 |
| 2.6 石蜡切片和组织染色 | 第40-43页 |
| 2.7 缓冲液配方 | 第43-46页 |
| 3. 研究内容与结果 | 第46-68页 |
| 3.1 系统性筛选调控铁调素的维生素 | 第46-49页 |
| 3.1.1 体外实验筛选调控铁调素的维生素 | 第46页 |
| 3.1.2 体内实验进一步筛选调控Hepcidin的维生素 | 第46-49页 |
| 3.2 维生素B4(腺嘌呤)上调Hepcidin表达与药物浓度和处理时间相关 | 第49-51页 |
| 3.2.1 维生素B4(腺嘌呤)激活Hepcidin表达与药物浓度相关 | 第49页 |
| 3.2.2 维生素B4(腺嘌呤)激活Hepcidin表达与药物处理时间相关 | 第49-51页 |
| 3.3 维生素B4(腺嘌呤)直接激活Hepcidin启动子活性 | 第51页 |
| 3.4 维生素B4(腺嘌呤)通过激活BMP/SMAD通路和MAPK/ERK通路上调Hepcidin表达 | 第51-53页 |
| 3.5 维生素B4(腺嘌呤)通过上调Hepcidin降低高铁饲料饲喂小鼠的铁水平 | 第53-56页 |
| 3.6 维生素B4(腺嘌呤)通过上调Hepcidin降低遗传性血色病小鼠的铁水平 | 第56-58页 |
| 3.7 深入探究维生素B4(腺嘌呤)激活Hepcidin的机制 | 第58-62页 |
| 3.7.1 LDN193189和U0126阻断Hepcidin上调Hepcidin的作用 | 第58-59页 |
| 3.7.2 维生素B4(腺嘌呤)激活cAMP/PKA通路,从而激活下游BMP/SMAD通路和MAPK/ERK通路 | 第59-62页 |
| 3.8 维生素B4(腺嘌呤)调控Hepcidin模式图 | 第62页 |
| 3.9 维生素B4(腺嘌呤)毒理和安全性评价 | 第62-68页 |
| 3.9.1 CCK8试验检验细胞增殖率 | 第62-63页 |
| 3.9.2 小鼠血常规检测 | 第63-65页 |
| 3.9.3 小鼠肝肾功能评价 | 第65-66页 |
| 3.9.4 肾脏组织切片病理检测 | 第66-68页 |
| 4. 讨论 | 第68-72页 |
| 5. 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 文献综述 | 第78-105页 |
| 参考文献 | 第94-105页 |
| 作者简介及在读期间的科研成果 | 第105页 |
| 学术论文及专利情况 | 第105页 |
