摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
本文缩略词表 | 第11-12页 |
1 引言 | 第12-18页 |
1.1 研究背景 | 第12页 |
1.2 杨树品种简介 | 第12页 |
1.3 杨树转化受体系统研究进展 | 第12-15页 |
1.3.1 杨树受体系统的选择 | 第12-13页 |
1.3.2 影响杨树受体系统再生的相关因子研究 | 第13-15页 |
1.4 杨树遗传转化系统研究进展 | 第15-17页 |
1.4.1 杨树遗传转化方法 | 第15-16页 |
1.4.2 影响根癌农杆菌转化效果的因素 | 第16-17页 |
1.5 本研究目的和意义 | 第17-18页 |
2 SN04-31与LH04-17再生体系的建立 | 第18-34页 |
2.1 材料与方法 | 第18-21页 |
2.1.1 材料 | 第18-19页 |
2.1.2 方法 | 第19-21页 |
2.2 结果与分析 | 第21-33页 |
2.2.1 不同灭菌时间对外植体消毒效果的影响 | 第21-22页 |
2.2.2 增殖培养最佳方案建立 | 第22-28页 |
2.2.3 壮苗培养分析 | 第28-29页 |
2.2.4 不同培养基对组培苗生根的影响 | 第29-33页 |
2.2.5 试管苗的移栽与炼苗 | 第33页 |
2.3 讨论 | 第33-34页 |
2.3.1 外植体消毒 | 第33-34页 |
2.3.2 再生体系的建立 | 第34页 |
3 LH04-17叶片遗传转化受体系统的建立 | 第34-40页 |
3.1 材料与方法 | 第34-36页 |
3.1.1 材料 | 第34-35页 |
3.1.2 方法 | 第35-36页 |
3.2 结果与分析 | 第36-39页 |
3.2.1 叶片不定芽再生的最佳培养基筛选 | 第36-38页 |
3.2.2 不同生长部位对叶片不定芽分化的影响 | 第38-39页 |
3.2.3 生根苗与未生根苗叶片不定芽分化差异 | 第39页 |
3.3 讨论 | 第39-40页 |
4 农杆菌介导LH04-17遗传转化体系的建立及优化 | 第40-54页 |
4.1 材料 | 第40-41页 |
4.1.1 植物材料 | 第40页 |
4.1.2 农杆菌与质粒 | 第40-41页 |
4.1.3 药品与试剂 | 第41页 |
4.1.4 仪器与设备 | 第41页 |
4.2 方法 | 第41-44页 |
4.2.1 抗生素试验 | 第41-42页 |
4.2.2 正负对照的设置 | 第42页 |
4.2.3 农杆菌的活化培养 | 第42-43页 |
4.2.5 农杆菌介导LH04-17的遗传转化程序 | 第43页 |
4.2.6 影响遗传转化效果的因素 | 第43-44页 |
4.2.7 评价指标 | 第44页 |
4.3 结果与分析 | 第44-52页 |
4.3.1 卡那霉素对LH04-17叶片不定芽再生及生根的影响 | 第44-46页 |
4.3.2 抑菌抗生素对叶片不定芽再生及对农杆菌EHA105的影响 | 第46-47页 |
4.3.3 预培养时间对LH04-17转化效率的影响 | 第47-48页 |
4.3.4 菌液浓度对LH04-17转化效率的影响 | 第48-49页 |
4.3.5 侵染时间对LH04-17转化效率的影响 | 第49页 |
4.3.6 共培养时间对转化效率的影响 | 第49-50页 |
4.3.7 乙酰丁香酮(AS)对转化效率的影响 | 第50-51页 |
4.3.8 延迟选择对转化效率的影响 | 第51-52页 |
4.4 讨论 | 第52-54页 |
4.4.1 抗生素试验 | 第52-53页 |
4.4.2 影响遗传转化的因子 | 第53-54页 |
5 转基因植株的分子检测 | 第54-58页 |
5.1 材料与方法 | 第54-57页 |
5.1.1 材料 | 第54-56页 |
5.1.2 方法 | 第56-57页 |
5.2 结果与分析 | 第57-58页 |
5.2.1 LH04-17总DNA的提取 | 第57页 |
5.2.2 PCR产物检测 | 第57-58页 |
5.3 讨论 | 第58页 |
6 主要结论及进一步研究展望 | 第58-60页 |
6.1 主要结论 | 第58-59页 |
6.2 展望 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
致谢 | 第66页 |