| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩写与简称 | 第8-15页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 1、增强 UV-B 辐射对植物的生物学效应 | 第15-18页 |
| 1.1 增强 UV-B 辐射对植物生长发育的影响 | 第15-16页 |
| 1.2 增强 UV-B 辐射对植物生理活动的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.1 增强 UV-B 辐射对光合作用的影响 | 第16页 |
| 1.2.2 增强 UV-B 辐射对植物细胞膜及抗氧化系统的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.3 增强 UV-B 辐射对植物蛋白质及酶活性的影响 | 第17页 |
| 1.3 增强 UV-B 辐射对植物遗传物质的影响 | 第17-18页 |
| 2、激光的生物学效应 | 第18-19页 |
| 2.1 激光的种类及作用机制 | 第18页 |
| 2.2 激光对植物生长发育的影响 | 第18页 |
| 2.3 激光对植物生理生化代谢的影响 | 第18页 |
| 2.4 激光对植物遗传物质的影响 | 第18-19页 |
| 3、Rubisco 活化酶（RCA）概述 | 第19-20页 |
| 3.1 Rubisco 活化酶的分子特性 | 第19页 |
| 3.2 Rubisco 活化酶对 Rubisco 的活化 | 第19-20页 |
| 4、本研究的内容和意义 | 第20-22页 |
| 第一章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼叶光合作用生理指标的影响 | 第22-34页 |
| 1、材料 | 第22页 |
| 1.1 实验材料 | 第22页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第22页 |
| 1.3 实验主要仪器 | 第22页 |
| 2、实验方法 | 第22-26页 |
| 2.1 种子的萌发 | 第22页 |
| 2.2 处理设置 | 第22-23页 |
| 2.3 取材 | 第23页 |
| 2.4 光合作用生理指标的测定 | 第23-24页 |
| 2.4.1 叶绿素荧光参数的测定 | 第23页 |
| 2.4.2 叶绿素含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.5 Rubisco 活力的测定 | 第24-25页 |
| 2.5.1 试剂配方 | 第24页 |
| 2.5.2 酶粗提液的制备 | 第24页 |
| 2.5.3 Rubisco 活力测定 | 第24页 |
| 2.5.4 结果计算 | 第24-25页 |
| 2.6 核酮糖-1，5-二磷酸羧化/加氧酶（Rubisco）含量的分析 | 第25-26页 |
| 2.6.1 小麦幼叶 Rubisco 的提取 | 第25页 |
| 2.6.2 小麦幼叶 Rubisco 的含量测定 | 第25-26页 |
| 2.7 数据统计与分析 | 第26页 |
| 3、结果与分析 | 第26-32页 |
| 3.1 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗的 PSⅡ的叶绿素荧光产量的影响 | 第26-27页 |
| 3.2 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗的 PSⅡ最大光化学效率的影响 | 第27页 |
| 3.3 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗光化学猝灭系数的影响 | 第27-28页 |
| 3.4 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗非光化学猝灭系数的影响 | 第28-29页 |
| 3.5 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗光合作用能量效率的影响 | 第29页 |
| 3.6 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗光合电子传递效率（ETR）的影响 | 第29-30页 |
| 3.7 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗叶绿素含量的影响 | 第30页 |
| 3.8 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射 Rubisco 活力的影响 | 第30-31页 |
| 3.9 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦 Rubisco 含量的影响 | 第31-32页 |
| 4、讨论 | 第32-34页 |
| 第二章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼叶 Rubisco 活化酶含量的影响 | 第34-41页 |
| 1、材料 | 第34-35页 |
| 1.1 实验材料 | 第34页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第34页 |
| 1.3 实验主要仪器 | 第34-35页 |
| 2、实验方法 | 第35-37页 |
| 2.1 种子的萌发 | 第35页 |
| 2.2 处理设置 | 第35页 |
| 2.3 取材及材料的保存 | 第35页 |
| 2.4 Rubisco 活化酶的提取 | 第35-36页 |
| 2.4.1 Rubisco 活化酶的粗提取 | 第35页 |
| 2.4.2 盐析 | 第35页 |
| 2.4.3 透析脱盐与浓缩 | 第35-36页 |
| 2.5 Rubisco 活化酶的含量测定 | 第36页 |
| 2.6 SDS-PAGE 检测 Rubisco 活化酶 | 第36-37页 |
| 3、结果与分析 | 第37-39页 |
| 3.1 紫外分光图谱分析蛋白含量 | 第37-38页 |
| 3.1.1 粗提后的蛋白含量 | 第37页 |
| 3.1.2 不同饱和硫酸铵盐析后的蛋白含量 | 第37-38页 |
| 3.1.3 盐析纯化后的蛋白含量 | 第38页 |
| 3.2 SDS-PAGE 对 Rubisco 活化酶的鉴定 | 第38-39页 |
| 4、讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼叶 Rubisco 活化酶基因表达与调控的影响 | 第41-59页 |
| 1、材料 | 第41-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第41页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第41页 |
| 1.3 实验主要仪器 | 第41-42页 |
| 2、实验方法 | 第42-49页 |
| 2.1 种子的萌发 | 第42页 |
| 2.2 处理设置 | 第42页 |
| 2.3 取材 | 第42页 |
| 2.4 NCBI 上查得的 RCA 序列 | 第42页 |
| 2.5 小麦叶片总 RNA 的提取 | 第42-44页 |
| 2.5.1 实验器具的准备 | 第42页 |
| 2.5.2 小麦叶片总 RNA 的提取 | 第42-43页 |
| 2.5.3 RNA 提取后进行琼脂糖电泳检测 | 第43-44页 |
| 2.5.4 RNA 提取后的纯度检测 | 第44页 |
| 2.6 小麦幼叶 Rubisco 活化酶基因的 RT-PCR | 第44-47页 |
| 2.6.1 小麦叶片总 RNA 反转录 cDNA | 第44-45页 |
| 2.6.2 内参基因的 RT-PCR（调整模板） | 第45-46页 |
| 2.6.3 RCA 基因的 RT-PCR | 第46页 |
| 2.6.4 用琼脂糖凝胶电泳分析扩增产物 | 第46页 |
| 2.6.5 PCR 产物凝胶回收 | 第46-47页 |
| 2.6.6 数据分析 | 第47页 |
| 2.7 荧光定量 PCR 检测小麦 Rubisco 活化酶基因表达 | 第47-49页 |
| 2.7.1 小麦幼苗叶片总 RNA 的提取 | 第47页 |
| 2.7.2 实时荧光定量 PCR 引物的设计与合成 | 第47页 |
| 2.7.3 反转录 cDNA 第一链的合成 | 第47-48页 |
| 2.7.4 实时荧光定量 PCR 检测引物扩增效率 | 第48页 |
| 2.7.5 实时荧光定量 PCR 检测 RCA 基因表达 | 第48-49页 |
| 2.7.6 数据分析 | 第49页 |
| 3、结果与分析 | 第49-57页 |
| 3.1 RNA 纯度及完整性的检测 | 第49-50页 |
| 3.1.1 RNA 纯度的检测结果 | 第49-50页 |
| 3.1.2 琼脂糖凝胶电泳检测小麦 Total RNA 的完整性结果 | 第50页 |
| 3.2 RCA 基因半定量 RT-PCR 表达结果分析 | 第50-51页 |
| 3.3 RCA 基因实时荧光定量 PCR 结果分析 | 第51-55页 |
| 3.3.1 实时荧光定量 PCR 引物扩增效率检测结果 | 第51-52页 |
| 3.3.2 实时荧光定量 PCR 表达图谱分析 | 第52-54页 |
| 3.3.3 实时荧光定量 PCR 分析 RCA 基因表达量 | 第54-55页 |
| 3.4 核苷酸序列和氨基酸序列分析 | 第55-57页 |
| 4、讨论 | 第57-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-73页 |
| 附录 | 第73页 |
