| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-24页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 基于微流控芯片的细胞分离和捕获方法 | 第9-18页 |
| 1.2.1 机械操控分离法 | 第9-11页 |
| 1.2.2 电诱导操控分离法 | 第11页 |
| 1.2.3 磁操控分离法 | 第11-18页 |
| 1.3 基于微流控细胞芯片的细胞培养及药物筛选 | 第18-22页 |
| 1.3.1 微流体驱动方式 | 第18-19页 |
| 1.3.2 检测方法 | 第19-20页 |
| 1.3.3 细胞培养方式 | 第20-21页 |
| 1.3.4 基于微流控芯片技术的药物筛选研究 | 第21-22页 |
| 1.4 本文研究目标和研究内容 | 第22-24页 |
| 2 微流控细胞芯片设计及芯片分析系统构建 | 第24-34页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 芯片设计 | 第24-25页 |
| 2.2.1 芯片材料选择 | 第24页 |
| 2.2.2 含阵列微磁柱细胞芯片设计 | 第24-25页 |
| 2.2.3 集成6×6阵列微腔细胞芯片设计 | 第25页 |
| 2.3 芯片制作 | 第25-28页 |
| 2.3.1 玻璃基片加工流程 | 第25-26页 |
| 2.3.2 PDMS盖片制作 | 第26-28页 |
| 2.3.3 PDMS-玻璃可逆键合制备微流控细胞芯片 | 第28页 |
| 2.4 微流控细胞芯片分析系统构建 | 第28-29页 |
| 2.5 细胞芯片性能测试 | 第29-33页 |
| 2.5.1 阵列微磁柱对磁珠分布状况的影响 | 第29-31页 |
| 2.5.2 6×6阵列微腔内细胞的分布状况 | 第31-33页 |
| 2.6 本章小结 | 第33-34页 |
| 3 微流控细胞芯片对磁标记细胞的捕获研究 | 第34-47页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-38页 |
| 3.2.1 仪器与设备 | 第34页 |
| 3.2.2 试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.3 样本 | 第35页 |
| 3.2.4 采用内吞法对Hep-G2细胞进行磁标记 | 第35-36页 |
| 3.2.5 采用免疫法法对Hep-G2细胞进行磁标记 | 第36-37页 |
| 3.2.6 从血细胞中分离捕获磁标记HepG2细胞的研究 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-45页 |
| 3.3.1 采用内吞法对Hep-G2细胞进行磁标记 | 第38-40页 |
| 3.3.2 采用内吞法对Hep-G2细胞进行磁标记 | 第40-42页 |
| 3.3.3 从血细胞混悬液中进行磁标记HepG2细胞分离捕获的研究 | 第42-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 4 微流控细胞芯片用于细胞培养及药物筛选研究 | 第47-54页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-49页 |
| 4.2.1 仪器与设备 | 第47页 |
| 4.2.2 药品与试剂 | 第47-48页 |
| 4.2.3 溶液配制及样本制备 | 第48页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-52页 |
| 4.3.1 肿瘤细胞培养 | 第49-50页 |
| 4.3.2 HepG2细胞的生长曲线测试 | 第50-51页 |
| 4.3.3 香柑内酯对HepG2细胞的毒性测试 | 第51-52页 |
| 4.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 5 结论与展望 | 第54-56页 |
| 5.1 结论 | 第54-55页 |
| 5.2 展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 附录 | 第62页 |
