| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-38页 |
| 1 国内外鹌鹑产业的发展现状 | 第16-18页 |
| 1.1 世界鹌鹑产业的发展概况 | 第16-17页 |
| 1.2 我国鹌鹑产业的发展现状 | 第17-18页 |
| 2 分子标记及其在畜禽生产中的应用 | 第18-22页 |
| 2.1 分子标记的种类 | 第19页 |
| 2.2 SNP的特点及其应用 | 第19-22页 |
| 3 分子标记在鹌鹑上的研究现状及存在问题 | 第22-25页 |
| 3.1 鹌鹑羽色基因的研究 | 第22页 |
| 3.2 鹌鹑生产性能候选基因及遗传多样性方面的研究 | 第22-23页 |
| 3.3 鹌鹑免疫蛋白抗体的研究 | 第23页 |
| 3.4 鹌鹑性别分化及其和鸡杂交试验的研究 | 第23-24页 |
| 3.5 鹌鹑遗传学分类研究 | 第24页 |
| 3.6 其他方面的研究 | 第24-25页 |
| 4 家禽繁殖相关候选基因的研究现状 | 第25-36页 |
| 4.1 催乳素基因及其受体基因 | 第26-29页 |
| 4.2 血管活性肠肽及其受体基因 | 第29-31页 |
| 4.3 雌激素及其受体(ESR)基因 | 第31-33页 |
| 4.4 促性腺激素释放激素基因 | 第33-36页 |
| 5 本研究的目的及意义 | 第36-38页 |
| 第二章 鹌鹑ESR1基因SNP检测及其与繁殖性状的关联 | 第38-57页 |
| 1 前言 | 第38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-45页 |
| 2.1 试验材料 | 第38-42页 |
| 2.1.1 试验鹌鹑群体与繁殖性状资料记录 | 第38-39页 |
| 2.1.2 鹌鹑血液样品的采集 | 第39页 |
| 2.1.3 本试验所用仪器设备 | 第39页 |
| 2.1.4 试验过程中所用的主要试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.5 试验室常用溶液及其配制过程 | 第40-42页 |
| 2.1.6 试验中涉及的主要分子生物学网站与分子生物学软件 | 第42页 |
| 2.2 试验方法 | 第42-45页 |
| 2.2.1 鹌鹑ESR1基因的多态性分析 | 第42-44页 |
| 2.2.2 扩增产物测序及序列比对分析 | 第44页 |
| 2.2.3 PCR-RFLP酶切分型与群体遗传结构分析 | 第44-45页 |
| 2.2.4 数据统计与性状关联分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-54页 |
| 3.1 鹌鹑ESR1基因部分外显子序列的SNPs检测 | 第45-47页 |
| 3.2 C312T位点在不同鹌鹑群体中的基因型分布 | 第47-48页 |
| 3.3 C312T位点与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第48-49页 |
| 3.4 C50T位点在不同鹌鹑群体中的基因型分布 | 第49-50页 |
| 3.5 C50T位点与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第50-51页 |
| 3.6 三个鹌鹑群体中C312T和C50T位点连锁不平衡分析 | 第51页 |
| 3.7 C312T和C50T位点在H型群体重构单倍型与繁殖性状关联分析 | 第51-52页 |
| 3.8 C312T和C50T位点在L型群体重构单倍型与繁殖性状关联分析 | 第52页 |
| 3.9 C91T位点在不同鹌鹑群体中的基因型分布 | 第52-53页 |
| 3.10 C91T位点与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 4.1 选择造成了鹌鹑群体遗传结构的变化 | 第54-55页 |
| 4.2 鹌鹑ESR1基因具有多态性 | 第55页 |
| 4.3 鹌鹑ESR1基因变异影响鹌鹑的产蛋性能 | 第55-56页 |
| 5 结论 | 第56-57页 |
| 第三章 鹌鹑GnRH1基因的克隆及其功能研究 | 第57-74页 |
| 1 前言 | 第57页 |
| 2 试验材料与试验方法 | 第57-64页 |
| 2.1 试验材料 | 第57-59页 |
| 2.1.1 试验鹌鹑的来源、血液样品的采集及繁殖性状资料的收集 | 第57-58页 |
| 2.1.2 鹌鹑不同组织样品的采集 | 第58页 |
| 2.1.3 鹌鹑总RNA及血液基因组DNA的获得 | 第58页 |
| 2.1.4 本实验涉及的主要仪器设备 | 第58页 |
| 2.1.5 主要试剂 | 第58页 |
| 2.1.6 常用溶液及其配制 | 第58页 |
| 2.1.7 本实验涉及的主要分子生物学网站及分析统计软件 | 第58-59页 |
| 2.2 实验方法 | 第59-64页 |
| 2.2.1 鹌鹑GNRH1基因cDNA编码区序列克隆 | 第59-61页 |
| 2.2.2 鹌鹑GnRH1基因组织表达谱分析 | 第61-62页 |
| 2.2.3 鹌鹑GnRH1基因部分编码区的SNPs检测 | 第62-63页 |
| 2.2.4 PCR-RFLP酶切分型与群体遗传结构分析 | 第63页 |
| 2.2.5 数据统计与性状关联分析 | 第63-64页 |
| 2.2.6 序列结果分析 | 第64页 |
| 3 结果 | 第64-71页 |
| 3.1 鹌鹑肝脏组织总RNA的质量检测 | 第64-65页 |
| 3.2 鹌鹑GnRH1基因cDNA部分序列的克隆及生物信息学分析 | 第65-68页 |
| 3.2.1 鹌鹑GnRH1基因的克隆 | 第65页 |
| 3.2.2 鹌鹑GNRH1基因生物信息学分析 | 第65-68页 |
| 3.3 鹌鹑GnRH1基因系统进化树的构建 | 第68-69页 |
| 3.4 鹌鹑GnRH1基因组织表达谱分析 | 第69-70页 |
| 3.5 鹌鹑GnRH1基因部分编码区SNPs的检测 | 第70-71页 |
| 4 讨论 | 第71-73页 |
| 4.1 关于生物信息学对基因功能分析的作用 | 第71-72页 |
| 4.2 鹌鹑具有和鸡等较近的亲缘关系 | 第72页 |
| 4.3 GnRH1基因在不同物种中的组织分布存在差异 | 第72-73页 |
| 5 结论 | 第73-74页 |
| 第四章 鹌鹑PRLR基因克隆及其功能研究 | 第74-95页 |
| 1 前言 | 第74页 |
| 2 材料与方法 | 第74-80页 |
| 2.1 试验材料 | 第74-75页 |
| 2.1.1 实验鹌鹑群体来源、血样采集及繁殖性状资料收集 | 第74-75页 |
| 2.1.2 不同组织总RNA样的收集 | 第75页 |
| 2.1.3 主要实验仪器和设备 | 第75页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第75页 |
| 2.1.5 试验中应用的主要分子生物学软件 | 第75页 |
| 2.2 实验方法 | 第75-80页 |
| 2.2.1 鹌鹑PRLR基因cDNA编码区序列的克隆 | 第75-79页 |
| 2.2.2 鹌鹑PRLR基因编码区SNPs检测 | 第79-80页 |
| 3 结果 | 第80-92页 |
| 3.1 总RNA质量检测及 5’，3’-UTR扩增 | 第80-81页 |
| 3.1.1 总RNA质量检测 | 第80-81页 |
| 3.1.2 PRLR基因部分CDS区，5’-UTR，3’-UTR的扩增 | 第81页 |
| 3.2 鹌鹑PRLR基因部分cDNA序列分析 | 第81-87页 |
| 3.3 鹌鹑PRLR基因系统进化树 | 第87页 |
| 3.4 鹌鹑PRLR基因组织表达谱 | 第87-89页 |
| 3.5 鹌鹑PRLR基因编码区SNPs检测 | 第89-90页 |
| 3.6 C104T位点在不同鹌鹑群体中的基因型分布 | 第90-91页 |
| 3.7 C104T位点与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第91-92页 |
| 4 讨论 | 第92-94页 |
| 4.1 关于基因克隆 | 第92-93页 |
| 4.2 PRLR基因在不同物种各组织中分布差异 | 第93页 |
| 4.3 PRLR基因多态性丰富且与产蛋量性状相关度较高 | 第93-94页 |
| 5 小结 | 第94-95页 |
| 第五章 鹌鹑VIPR-1 的SNP检测及其与繁殖性状的关联 | 第95-108页 |
| 1 前言 | 第95页 |
| 2 试验材料与试验方法 | 第95-98页 |
| 2.1 试验材料 | 第95-96页 |
| 2.1.1 试验鹌鹑群体来源及与性状指标记录 | 第95页 |
| 2.1.2 试验鹌鹑血样采集 | 第95页 |
| 2.1.3 主要试验仪器与设备 | 第95页 |
| 2.1.4 主要试剂和溶液及配制 | 第95-96页 |
| 2.1.5 主要分子生物学网站及所用软件 | 第96页 |
| 2.2 试验方法 | 第96-98页 |
| 2.2.1 鹌鹑VIPR-1 基因的多态性分析 | 第96-97页 |
| 2.2.2 基因测序及序列比对分析 | 第97页 |
| 2.2.3 PCR-RFLP酶切分型与群体遗传结构分析 | 第97-98页 |
| 2.2.4 数据统计与性状关联分析 | 第98页 |
| 3 结果 | 第98-105页 |
| 3.1 鹌鹑VIPR-1 基因的SNP检测 | 第98-100页 |
| 3.2 G373T位点在不同鹌鹑品种的基因型分布 | 第100-101页 |
| 3.3 鹌鹑VIPR-1 基因突变位点G373T与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第101-102页 |
| 3.4 鹌鹑VIPR-1 基因突变位点A313G在不同鹌鹑群体中的基因型分布 | 第102-103页 |
| 3.5 鹌鹑VIPR-1 基因突变位点A313G与鹌鹑繁殖性状关联分析 | 第103页 |
| 3.6 三个鹌鹑群体中G373T和A313G位点连锁不平衡分析 | 第103-104页 |
| 3.7 鹌鹑VIPR-1 基因突变位点G373T和A313G在H型群体重构单倍型与繁殖性状关联分析 | 第104页 |
| 3.8 鹌鹑VIPR-1 基因突变位点G373T和A313G在L型群体重构单倍型与繁殖性状关联分析 | 第104-105页 |
| 4 讨论 | 第105-107页 |
| 4.1 VIPR-1 基因具有丰富的多态性 | 第105-106页 |
| 4.2 不同鹌鹑群体遗传结构分析 | 第106页 |
| 4.3 鹌鹑VIPR1基因变异会影响鹌鹑的产蛋性能 | 第106-107页 |
| 5 结论 | 第107-108页 |
| 第六章 结论与展望 | 第108-110页 |
| 1 已取得结果 | 第108页 |
| 2 本研究的创新点和特色 | 第108-109页 |
| 3 本研究的不足与值得进一步研究的问题 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 在读期间发表（投稿）论文题录 | 第130-131页 |
