| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| abstract | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第16-23页 |
| 1.1 猕猴桃的营养价值 | 第16页 |
| 1.2 猕猴桃的功效 | 第16-17页 |
| 1.2.1 抗氧化作用 | 第16-17页 |
| 1.2.2 抗癌防癌作用 | 第17页 |
| 1.3 重金属铅 | 第17-20页 |
| 1.3.1 人体中铅的主要来源 | 第17-18页 |
| 1.3.2 铅的神经毒性 | 第18-20页 |
| 1.4 海马与学习记忆 | 第20页 |
| 1.5 树突棘与学习记忆 | 第20页 |
| 1.6 神经小胶质细胞与学习记忆 | 第20-21页 |
| 1.7 课题研究的背景和意义 | 第21-23页 |
| 1.7.1 课题研究的主要内容 | 第22-23页 |
| 第二章 不同品种猕猴桃抗氧化成分分析 | 第23-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.1.3 主要试剂和药品 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 猕猴桃汁的制备 | 第24页 |
| 2.2.2 猕猴桃粉末的制备 | 第24页 |
| 2.2.3 猕猴桃汁总酚含量的测定(福林酚法) | 第24页 |
| 2.2.4 维生素C含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.3 数据分析 | 第25页 |
| 2.4 实验结果 | 第25-27页 |
| 2.4.1 五种不同品种猕猴桃中多酚含量不同 | 第25-26页 |
| 2.4.2 猕猴桃中VC含量及制粉后损失率 | 第26-27页 |
| 2.5 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 猕猴桃抗氧化作用研究 | 第28-37页 |
| 3.1 猕猴桃体外抗氧化作用 | 第28-32页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.1.3 数据分析 | 第29页 |
| 3.1.4 实验结果 | 第29-32页 |
| 3.2 猕猴桃对PC12细胞的抗氧化作用 | 第32-35页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第32页 |
| 3.2.2 实验细胞 | 第32页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.4 数据分析 | 第33页 |
| 3.2.5 实验结果 | 第33-35页 |
| 3.3 讨论 | 第35-37页 |
| 第四章 猕猴桃对铅致记忆损伤的修复作用及机理研究 | 第37-60页 |
| 4.1 实验材料 | 第37-40页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第37页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第37页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第37-38页 |
| 4.1.4 溶液配制 | 第38-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-49页 |
| 4.2.1 行为学实验 | 第40-41页 |
| 4.2.2 Golgi-cox染色 | 第41页 |
| 4.2.3 大鼠脑组织中铅含量测定 | 第41-42页 |
| 4.2.4 大鼠脑组织中VC含量测定 | 第42页 |
| 4.2.5 大鼠海马组织中相关抗氧化物酶活性 | 第42-44页 |
| 4.2.6 SOD2,GSH-Px基因表达水平的检测 | 第44-46页 |
| 4.2.7 Western blot蛋白定量 | 第46-48页 |
| 4.2.8 促炎性因子基因表达水平 | 第48-49页 |
| 4.2.9 数据分析 | 第49页 |
| 4.3 实验结果 | 第49-57页 |
| 4.3.1 大鼠脑组织中铅和维生素C含量的测定 | 第49-50页 |
| 4.3.2 猕猴桃对铅暴露大鼠学习记忆能力的影响 | 第50-52页 |
| 4.3.3 猕猴桃对铅致大鼠海马树突棘密度降低的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.4 猕猴桃对染铅大鼠海马SOD,GSH-Px活性的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.5 猕猴桃对染铅大鼠海马SOD2,GSH-Px基因表达水平的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.6 猕猴桃对染铅大鼠神经小胶质细胞活性的影响 | 第55-56页 |
| 4.3.7 猕猴桃对染铅大鼠海马促炎性因子TNF-α和IL-1β mRNA表达的影响 | 第56-57页 |
| 4.4 讨论 | 第57-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第64页 |
