| 中文摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 靶向性配体 | 第12-20页 |
| 1.1.1 叶酸与叶酸受体 | 第12-14页 |
| 1.1.2 叶酸的活化偶联 | 第14-17页 |
| 1.1.3 叶酸作为靶向配体的应用 | 第17-18页 |
| 1.1.4 配体之二——生物素 | 第18-20页 |
| 1.2 高分子基体——壳聚糖 | 第20-22页 |
| 1.3 壳聚糖微/纳米颗粒的制备方法 | 第22-27页 |
| 1.3.1 乳液交联法 | 第22-23页 |
| 1.3.2 凝聚/沉淀法 | 第23-24页 |
| 1.3.3 喷雾干燥法 | 第24页 |
| 1.3.4 乳化液滴聚结法 | 第24-25页 |
| 1.3.5 反（相）胶束法 | 第25-26页 |
| 1.3.6 离子凝胶法 | 第26-27页 |
| 1.4 本章小结 | 第27-29页 |
| 第二章 叶酸化壳聚糖的合成与表征 | 第29-45页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 壳聚糖的纯化与脱乙酰度的检测 | 第31-32页 |
| 2.2.2 叶酸化壳聚糖的合成 | 第32页 |
| 2.2.3 材料合成的表征 | 第32页 |
| 2.2.4 叶酸标准曲线的绘制 | 第32-33页 |
| 2.2.5 正交试验设计 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.3.1 脱乙酰度 | 第34-36页 |
| 2.3.2 红外及紫外光谱分析 | 第36-39页 |
| 2.3.3 核磁共振氢谱分析 | 第39-40页 |
| 2.3.4 正交试验结果讨论 | 第40-43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 双配体修饰壳聚糖的制备与表征 | 第45-55页 |
| 3.1 实验试剂与仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第45页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第45-46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.2.1 生物素酯的合成 | 第46页 |
| 3.2.2 生物素化壳聚糖的合成 | 第46-47页 |
| 3.2.3 双靶修饰材料的合成与表征 | 第47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-53页 |
| 3.3.1 双靶材料的合成路线 | 第47-49页 |
| 3.3.2 红外光谱分析 | 第49-51页 |
| 3.3.3 核磁共振氢谱分析 | 第51-53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 载药(5-FU)纳米颗粒的初步制备与探讨 | 第55-71页 |
| 4.1 实验试剂与仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第55页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第55-56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 离子交联法制备纳米悬液 | 第56页 |
| 4.2.2 纳米颗粒的表征 | 第56-57页 |
| 4.2.3 正交试验设计 | 第57页 |
| 4.2.4 5-Fu紫外吸收标准曲线绘制 | 第57-58页 |
| 4.2.5 不同 5-Fu/CS质量比纳米颗粒的制备 | 第58页 |
| 4.2.6 载药包封率的测定 | 第58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-69页 |
| 4.3.1 纳米悬液粒径分布和纳米颗粒形貌观察 | 第58-60页 |
| 4.3.2 正交试验结果分析与优化验证 | 第60-65页 |
| 4.3.3 5-Fu紫外吸收标准曲线 | 第65-67页 |
| 4.3.4 5-Fu/CS质量比对包封率的影响 | 第67-69页 |
| 4.4 本章小结 | 第69-71页 |
| 第五章 结论与展望 | 第71-74页 |
| 5.1 结论 | 第71-72页 |
| 5.2 展望 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 攻读硕士学位期间的科研成果 | 第80页 |