| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 微分离技术的概述 | 第12页 |
| 1.2 微柱技术的简介 | 第12-13页 |
| 1.2.1 毛细管电泳技术 | 第12页 |
| 1.2.2 微柱液相色谱技术 | 第12-13页 |
| 1.3 毛细管电色谱 | 第13-15页 |
| 1.3.1 毛细管电色谱的概述 | 第13页 |
| 1.3.2 毛细管电色谱的基本理论 | 第13-15页 |
| 1.4 毛细管色谱柱的介绍 | 第15-16页 |
| 1.4.1 毛细管开管柱 | 第15-16页 |
| 1.4.2 毛细管填充柱 | 第16页 |
| 1.4.3 毛细管整体柱 | 第16页 |
| 1.5 整体柱的分类 | 第16-20页 |
| 1.5.1 有机聚合物整体柱 | 第16-17页 |
| 1.5.2 无机-硅胶整体柱 | 第17-18页 |
| 1.5.3 有机-无机杂化整体柱 | 第18-20页 |
| 1.6 整体柱的应用 | 第20-22页 |
| 1.6.1 微分离 | 第20-21页 |
| 1.6.2 样品的预处理 | 第21页 |
| 1.6.3 固定酶反应器 | 第21-22页 |
| 1.7 本文构思 | 第22-23页 |
| 第2章 基于巯-烯点击反应制备次甲基丁二酸整体柱及在毛细管电色谱中的应用 | 第23-33页 |
| 2.1 前言 | 第23-24页 |
| 2.2 实验部分 | 第24-26页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第24页 |
| 2.2.2 仪器 | 第24页 |
| 2.2.3 制备次甲基丁二酸整体柱 | 第24-25页 |
| 2.2.4 整体柱表征的方法 | 第25页 |
| 2.2.5 电色谱实验条件 | 第25-26页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第26-32页 |
| 2.3.1 整体柱的制备条件 | 第26-27页 |
| 2.3.2 电渗流的概述 | 第27-28页 |
| 2.3.3 对整体柱柱效的评价 | 第28页 |
| 2.3.4 次甲基丁二酸整体柱分离性能的评价 | 第28-31页 |
| 2.3.5 重现性和稳定性 | 第31页 |
| 2.3.6 整体柱的应用 | 第31-32页 |
| 2.4 小结 | 第32-33页 |
| 第3章 基于绿色荧光蛋白功能化的毛细管整体柱构建自动和集成化的微酶测定（AIμEA）平台 | 第33-42页 |
| 3.1 前言 | 第33-34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-36页 |
| 3.2.1 试剂和材料 | 第34页 |
| 3.2.2 感受态细胞的制备 | 第34页 |
| 3.2.3 重组GFP的SDS-PAGE | 第34-35页 |
| 3.2.4 重组GFP的表达和纯化 | 第35页 |
| 3.2.5 AIμEA柱的构建和表征 | 第35-36页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第36-41页 |
| 3.3.1 AIμEA平台构建的原理描述 | 第36-37页 |
| 3.3.2 GFP的表达纯化 | 第37页 |
| 3.3.3 AIμEA平台的构建和表征 | 第37-41页 |
| 3.4 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 自动和集成化的微酶测定（AIμEA）平台用于凝血酶的高灵敏度分析 | 第42-54页 |
| 4.1 前言 | 第42-43页 |
| 4.2 实验部分 | 第43-44页 |
| 4.2.1 试剂和材料 | 第43页 |
| 4.2.2 毛细管电泳-激光诱导荧光（CE-LIF）分析 | 第43页 |
| 4.2.3 实际样品中凝血酶的检测 | 第43页 |
| 4.2.4 再生过程 | 第43-44页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第44-52页 |
| 4.3.1 AIμEA平台工作的原理描述 | 第44页 |
| 4.3.2 基于AIμEA平台与CE-LIF的凝血酶的全自动、免标记及灵敏的分析 | 第44-50页 |
| 4.3.3 AIμEA平台的应用 | 第50-51页 |
| 4.3.4 AIμEA平台的持久性工作和再生能力 | 第51-52页 |
| 4.4 小结 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
