| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 英汉缩略语名词对照 | 第14-15页 |
| 1 引言 | 第15-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-31页 |
| 2.1 实验动物来源及分组 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验动物来源 | 第19页 |
| 2.1.2 实验动物分组 | 第19-20页 |
| 2.2 主要实验仪器、试剂以及部分试剂配制方法 | 第20-24页 |
| 2.2.1 主要仪器及设备 | 第20-21页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.3 部分试剂配制 | 第22-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-31页 |
| 2.3.1 福尔马林炎症痛模型的建立及给药方式 | 第24-25页 |
| 2.3.2 RNA提取和cDNA合成 | 第25-26页 |
| 2.3.3 实时荧光定量PCR检测 | 第26-28页 |
| 2.3.4 PCR Array（基因芯片技术） | 第28页 |
| 2.3.5 Western Blot | 第28-29页 |
| 2.3.6 ELISA（酶联免疫分析） | 第29-30页 |
| 2.3.7 统计学分析 | 第30-31页 |
| 3 结果 | 第31-39页 |
| 3.1 Spexin在福尔马林测试中对疼痛反应的影响 | 第31-32页 |
| 3.1.1 Spexin在第一时相对疼痛反应的影响 | 第31页 |
| 3.1.2 Spexin在第二时相对疼痛反应的影响 | 第31-32页 |
| 3.2 C端非酰胺化Spexin在福尔马林测试中对疼痛反应的影响 | 第32页 |
| 3.3 阿片受体拮抗剂纳洛酮和GABAA受体拮抗剂荷包牡丹碱对Spexin诱导的镇痛作用的影响 | 第32-34页 |
| 3.3.1 阿片受体拮抗剂纳洛酮对Spexin诱导的镇痛作用的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 GABAA受体拮抗剂荷苞牡丹碱对Spexin诱导的镇痛作用的影响 | 第34页 |
| 3.4 Spexin对小鼠脑组织阿片肽和阿片受体mRNAs表达水平的影响 | 第34-36页 |
| 3.4.1 Spexin对小鼠脑组织内源性阿片肽mRNAs表达的影响 | 第35页 |
| 3.4.2 Spexin对小鼠脑组织三种阿片受体亚型的mRNA表达的影响 | 第35-36页 |
| 3.5 Spexin对小鼠脑组织PDYN和KOR蛋白表达的影响 | 第36-37页 |
| 3.6 基因芯片技术和RT-qPCR分析相关基因的表达量 | 第37-39页 |
| 3.6.1 基因芯片技术分析Spexin对小鼠脑组织Fos基因表达的影响 | 第38页 |
| 3.6.2 RT-qPCR分析Spexin对小鼠脑组织Fos基因表达的影响 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-45页 |
| 5 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 文献综述 | 第51-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
