| 中文摘要 | 第12-16页 |
| 英文摘要 | 第16-19页 |
| 第一部 人脂肪来源干细胞的分离、培养及鉴定 | 第20-33页 |
| (一) 前言 | 第20-21页 |
| (二) 材料和方法 | 第21-24页 |
| 1. 材料 | 第21-22页 |
| 1.1 实验脂肪组织 | 第21页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂 | 第21页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第21-22页 |
| 2. 方法 | 第22-24页 |
| 2.1 hADSCs的分离、培养及鉴定 | 第22-23页 |
| 2.2 hADSCs细胞活力的检测测 | 第23页 |
| 2.3 细胞增殖能力检测细胞增殖能力检测 | 第23页 |
| 2.4 hADSCs多向分化潜能检测 | 第23-24页 |
| 2.5 统计学分析 | 第24页 |
| (三) 结果 | 第24-27页 |
| 1. hADSCs的生物学特性 | 第25-26页 |
| 1.1 hADSCs形态学观察 | 第25页 |
| 1.2 hADSCs表面抗原鉴定 | 第25-26页 |
| 2. hADSCs细胞活力的检测 | 第26页 |
| 3. hADSCs增值活性 | 第26页 |
| 4. hADSCs多向分化潜能 | 第26-27页 |
| (四) 讨论 | 第27-29页 |
| (五) 结论 | 第29-30页 |
| (六) 参考文献 | 第30-33页 |
| 第二部 Ferumoxytol标记hADSCs及其生物学影响 | 第33-46页 |
| (一) 前言 | 第33页 |
| (二) 材料和方法 | 第33-36页 |
| 1. 材料 | 第33-34页 |
| 1.1 实验脂肪组织 | 第33页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第33-34页 |
| 1.3 主要试剂 | 第34页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第34页 |
| 2. 方法 | 第34-36页 |
| 2.1 hADSCs的分离、培养及鉴定 | 第34页 |
| 2.2 Ferumoxytol体外标记hADSCs及标记效率检测 | 第34-35页 |
| 2.3 HPF标记hADSCs浓度筛选 | 第35页 |
| 2.4 流式细胞仪检测HPF标记hADSCs表面抗原 | 第35页 |
| 2.5 HPF标记hADSCs多向分化潜能检测 | 第35-36页 |
| 2.6 统计学分析 | 第36页 |
| (三) 结果 | 第36-40页 |
| 1. PF、HPF和F-PLL复合物标记hADSCs效果 | 第36页 |
| 2. 不同浓度HPF标记hADSCs的生物学特性检测 | 第36-38页 |
| 2.1 不同标记浓度细胞形态学观察 | 第36-37页 |
| 2.2 不同浓度HPF细胞标记效率 | 第37-38页 |
| 2.3 不同标记浓度对细胞增殖能力的影响 | 第38页 |
| 3. HPF标记hADSCs细胞形态及活力检测 | 第38-39页 |
| 4. Annexin/碘化吡啶(PI)双染色法检测HPF标记对hADSCs细胞凋亡的影响 | 第39页 |
| 5. HPF标记hADSCs表面抗原检测 | 第39页 |
| 6. HPF标记hADSCs多向分化潜能检测 | 第39-40页 |
| (四) 讨论 | 第40-43页 |
| (五) 结论 | 第43-44页 |
| (六) 参考文献 | 第44-46页 |
| 第三部 Ferumoxytol标记hADSCs的体内外MR成像研究 | 第46-61页 |
| (一) 前言 | 第46-47页 |
| (二) 材料和方法 | 第47-50页 |
| 1. 材料 | 第47-48页 |
| 1.1 实验动物 | 第47页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第47页 |
| 1.3 主要试剂 | 第47页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第47-48页 |
| 2. 方法 | 第48-50页 |
| 2.1 hADSCs的分离、培养及鉴定 | 第48页 |
| 2.2 HPF纳米复合物标记hADSCs | 第48页 |
| 2.3 hADSCs标记后体外MRI | 第48-49页 |
| 2.4 磁标记细胞活体移植,MRI检查及普鲁士蓝染色 | 第49-50页 |
| 2.5 统计学分析 | 第50页 |
| (三) 结果 | 第50-54页 |
| 1. 磁标记hADSCs的体外磁共振成像 | 第50-52页 |
| 2. 磁标记hADSCs体内移植后的MRI和组织学 | 第52-54页 |
| (四) 讨论 | 第54-56页 |
| (五) 结论 | 第56-57页 |
| (六) 参考文献 | 第57-61页 |
| 第四部 MCAO大鼠模型的建立 | 第61-71页 |
| (一) 前言 | 第61页 |
| (二) 材料和方法 | 第61-65页 |
| 1. 材料 | 第61-62页 |
| 1.1 实验动物 | 第61-62页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第62页 |
| 1.3 主要试剂 | 第62页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第62页 |
| 1.5 线栓制备 | 第62页 |
| 2. 方法 | 第62-65页 |
| 2.1 MCAO线栓模型制作 | 第62-63页 |
| 2.2 模型成功的评价 | 第63页 |
| 2.3 大鼠行为学观察 | 第63-64页 |
| 2.4 MCAO模型制作后MRI动态监测 | 第64页 |
| 2.5 脑组织的病理学染色 | 第64-65页 |
| 2.6 统计学分析 | 第65页 |
| (三) 结果 | 第65-67页 |
| 1. MCAO大鼠模型成功率 | 第65页 |
| 2. 行为学评分 | 第65-66页 |
| 3. 磁共振成像 | 第66页 |
| 4. 脑组织的HE染色结果 | 第66-67页 |
| (四) 讨论 | 第67-68页 |
| (五) 结论 | 第68-69页 |
| (六) 参考文献 | 第69-71页 |
| 第五部 Ferumoxytol标记hADSCs移植治疗MCAO大鼠的MR活体示踪 | 第71-89页 |
| (一) 前言 | 第71-72页 |
| (二) 材料和方法 | 第72-74页 |
| 1. 材料 | 第72页 |
| 1.1 实验动物 | 第72页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第72页 |
| 1.3 主要试剂 | 第72页 |
| 1.4 主要试剂的配置 | 第72页 |
| 2. 方法 | 第72-74页 |
| 2.1 hADSCs的分离、培养及鉴定 | 第72页 |
| 2.2 HPF纳米复合物标记hADSCs | 第72页 |
| 2.3 MCAO大鼠模型制备 | 第72页 |
| 2.4 实验动物分组 | 第72-73页 |
| 2.5 术后行为学观察 | 第73页 |
| 2.6 hADSCs移植后的MRI动态监测 | 第73页 |
| 2.7 脑组织的病理学染色 | 第73-74页 |
| 2.8 统计学分析 | 第74页 |
| (三) 结果 | 第74-78页 |
| 1. MCAO大鼠hADSCs移植后的行为学观察 | 第74-76页 |
| 2. MRI动态观察结果 | 第76-77页 |
| 3. 脑组织切片普鲁士蓝染色 | 第77-78页 |
| 4. 脑组织切片HE染色 | 第78页 |
| (四) 讨论 | 第78-81页 |
| (五) 结论 | 第81-82页 |
| (六) 参考文献 | 第82-89页 |
| 综述 | 第89-100页 |
| 参考文献 | 第94-100页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
