| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 常用英文缩写表 | 第11-19页 |
| 第一部分 文献综述 | 第19-31页 |
| 第一章 辣木叶的研究进展 | 第19-26页 |
| 1. 辣木叶的营养成分 | 第19-21页 |
| 2. 辣木叶的主要成分 | 第21-22页 |
| 3. 辣木叶的功效 | 第22-25页 |
| 3.1 降血糖 | 第22页 |
| 3.2 保护心脏 | 第22-23页 |
| 3.3 保护肝脏 | 第23页 |
| 3.4 治疗胃溃疡 | 第23-24页 |
| 3.5 消炎抑菌 | 第24页 |
| 3.6 抗癌 | 第24页 |
| 3.7 提高免疫力促进生长 | 第24-25页 |
| 3.8 改善胃肠运动功能 | 第25页 |
| 4. 小结 | 第25-26页 |
| 第二章 DPP4抑制剂的研究进展 | 第26-31页 |
| 1. DPP-4 | 第26页 |
| 2. DPP-4抑制剂 | 第26-27页 |
| 3. DPP-4抑制剂的作用 | 第27-29页 |
| 3.1 影响GLP-1 | 第27页 |
| 3.2 影响糖代谢 | 第27页 |
| 3.3 影响脂代谢 | 第27-28页 |
| 3.4 影响胰腺 | 第28页 |
| 3.5 影响免疫 | 第28-29页 |
| 3.6 其他影响 | 第29页 |
| 3.7 不良反应 | 第29页 |
| 4. 小结 | 第29-31页 |
| 第二部分 实验研究 | 第31-117页 |
| 第三章 响应面法优化辣木叶总黄酮微波萃取工艺 | 第31-43页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第31-32页 |
| 1.1 实验材料 | 第31页 |
| 1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2. 实验方法 | 第32-33页 |
| 2.1 辣木叶去脂 | 第32页 |
| 2.2 标准曲线的建立 | 第32页 |
| 2.3 回流提取辣木叶总黄酮及含量测定 | 第32页 |
| 2.4 微波萃取辣木叶总黄酮及含量测定 | 第32-33页 |
| 2.5 辣木叶总黄酮得率计算 | 第33页 |
| 2.6 响应面法优化实验 | 第33页 |
| 2.7 最优工艺检验 | 第33页 |
| 3. 实验结果 | 第33-40页 |
| 3.1 标准曲线 | 第33-34页 |
| 3.2 回流提取辣木叶黄酮得率 | 第34页 |
| 3.3 微波萃取法单因素实验 | 第34-36页 |
| 3.4 响应面分析因素与水平设计 | 第36页 |
| 3.5 响应面法对辣木叶总黄酮微波提取工艺参数的优化 | 第36-40页 |
| 4. 分析与讨论 | 第40-42页 |
| 4.1 单因素试验 | 第40-41页 |
| 4.2 响应面法对辣木叶总黄酮微波提取工艺参数的优化 | 第41-42页 |
| 4.3 回流提取法与微波萃取法比较 | 第42页 |
| 5. 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 辣木叶总黄酮纯化工艺及几种主要成分含量测定研究 | 第43-66页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第43-44页 |
| 1.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 1.2. 实验仪器 | 第44页 |
| 2. 实验方法 | 第44-50页 |
| 2.1 辣木叶总黄酮样品的制备 | 第44页 |
| 2.2 树脂的预处理与装柱 | 第44-45页 |
| 2.3 大孔吸附树脂的筛选 | 第45-46页 |
| 2.4 HPD-750大孔树脂吸附分离辣木叶黄酮条件优化 | 第46-48页 |
| 2.5 辣木叶黄酮含量的测定 | 第48页 |
| 2.6 不同极性部位的分离 | 第48页 |
| 2.7 样品中四种成分含量的测定 | 第48-50页 |
| 3 实验结果 | 第50-62页 |
| 3.1 不同大孔树脂静态吸附、解吸辣木叶黄酮性能 | 第50-51页 |
| 3.2 不同大孔树脂对辣木叶黄酮静态吸附及解吸动力学 | 第51-52页 |
| 3.3 HPD-750大孔树脂柱吸附分离辣木叶黄酮条件优化 | 第52-55页 |
| 3.4 HPD-750大孔树脂吸附分离前后辣木叶黄酮含量的测定结果 | 第55-56页 |
| 3.5 不同极性部位的分离 | 第56页 |
| 3.6 样品中各种成分含量测定 | 第56-62页 |
| 4. 分析与讨论 | 第62-65页 |
| 4.1 不同大孔树脂静态吸附、解吸辣木叶黄酮性能 | 第62-63页 |
| 4.2 HPD-750大孔树脂柱吸附分离辣木叶黄酮条件优化 | 第63页 |
| 4.3 不同极性部位的分离 | 第63-64页 |
| 4.4 样品中成分含量测定 | 第64-65页 |
| 5. 小结 | 第65-66页 |
| 第五章 辣木叶总黄酮及异槲皮苷的体外降糖活性研究 | 第66-71页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第66-67页 |
| 1.1 实验材料 | 第66页 |
| 1.2 实验仪器 | 第66-67页 |
| 2. 实验方法 | 第67-68页 |
| 2.1 样品溶液配制 | 第67页 |
| 2.2 细胞培养 | 第67页 |
| 2.3 HepG2细胞对葡萄糖消耗作用 | 第67页 |
| 2.4 MTT毒性试验 | 第67-68页 |
| 3. 实验结果 | 第68-69页 |
| 3.1 辣木叶黄酮与异槲皮苷对HepG2细胞增殖的变化 | 第68页 |
| 3.2 辣木叶黄酮与异槲皮苷对HepG2细胞葡萄糖消耗的作用 | 第68-69页 |
| 4. 讨论 | 第69-70页 |
| 5. 小结 | 第70-71页 |
| 第六章 异槲皮苷对STZ诱导糖尿病大鼠血脂血糖的影响 | 第71-87页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第71-72页 |
| 1.1 实验材料 | 第71页 |
| 1.2 实验仪器 | 第71-72页 |
| 2. 实验方法 | 第72-74页 |
| 2.1 人工诱导2型糖尿病大鼠模型 | 第72-73页 |
| 2.2 异槲皮苷灌胃给药糖尿病模型大鼠 | 第73页 |
| 2.3 样本的采集与指标测定 | 第73-74页 |
| 2.4 各项血液指标的测定 | 第74页 |
| 2.5 胰岛相关指数计算 | 第74页 |
| 2.6 统计学分析 | 第74页 |
| 3. 实验结果 | 第74-82页 |
| 3.1 大鼠一般情况的观察 | 第74-75页 |
| 3.2 异槲皮苷对体重的影响 | 第75-77页 |
| 3.3 异槲皮苷对糖脂代谢的影响 | 第77-80页 |
| 3.4 异槲皮苷对SOD与MDA的影响 | 第80页 |
| 3.5 异槲皮苷对血清胰岛素及胰高血糖素肽-1的影响 | 第80-82页 |
| 3.6 胰岛素指数计算 | 第82页 |
| 4. 讨论 | 第82-86页 |
| 4.1 一般情况的变化 | 第82-83页 |
| 4.2 血糖的变化 | 第83-84页 |
| 4.3 血脂的变化 | 第84页 |
| 4.4 SOD与MDA的变化 | 第84页 |
| 4.5 胰岛素与胰高血糖素样肽-1的变化 | 第84-85页 |
| 4.6 胰岛素指数的变化 | 第85-86页 |
| 5. 小结 | 第86-87页 |
| 第七章 异槲皮苷对STZ诱导糖尿病大鼠胰岛细胞的影响 | 第87-93页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第87页 |
| 1.1 实验材料 | 第87页 |
| 1.2 实验仪器 | 第87页 |
| 2. 实验方法 | 第87-88页 |
| 2.1 切片的制作 | 第87页 |
| 2.2 胰腺的HE染色 | 第87-88页 |
| 2.3 醛复红染色 | 第88页 |
| 3. 结果 | 第88-91页 |
| 3.1 胰脏HE染色与醛复红染色 | 第88-91页 |
| 4. 讨论 | 第91-92页 |
| 5. 小结 | 第92-93页 |
| 第八章 异槲皮苷对STZ诱导糖尿病大鼠肝脏形态、血液指标及肝细胞凋亡及周期的影响 | 第93-102页 |
| 1. 材料 | 第93页 |
| 2. 方法 | 第93-94页 |
| 2.1 肝脏组织切片制作 | 第93页 |
| 2.2 血液指标的测定 | 第93-94页 |
| 2.3 肝脏组织细胞凋亡与周期的检测 | 第94页 |
| 3. 实验结果 | 第94-99页 |
| 3.1 肝脏组织切片观察 | 第94-95页 |
| 3.2 血液肝脏指标测定 | 第95-96页 |
| 3.3 肝脏组织细胞凋亡与周期观察 | 第96-99页 |
| 4 讨论 | 第99-101页 |
| 4.1 肝细胞HE染色 | 第99页 |
| 4.2 肝脏血液指标检测 | 第99-100页 |
| 4.3 肝脏组织细胞周期与凋亡率 | 第100-101页 |
| 5. 小结 | 第101-102页 |
| 第九章 异槲皮苷对2型糖尿病大鼠DPP4、InsR、PI_3K、AKT、PKA、PKCαmRNA表达水平的影响 | 第102-117页 |
| 1. 实验材料与仪器 | 第102-103页 |
| 1.1 实验材料 | 第102页 |
| 1.2 实验仪器 | 第102-103页 |
| 2. 实验方法 | 第103-107页 |
| 2.1 荧光定量PCR(qRT-PCR)引物设计与合成 | 第103页 |
| 2.2 组织材料中总RNA的提取 | 第103-104页 |
| 2.3 RNA沉淀的清洗 | 第104页 |
| 2.4 RNA的溶解 | 第104-105页 |
| 2.5 RNA纯度及浓度检测 | 第105页 |
| 2.6 RNA反转录(RT-PCR) | 第105-106页 |
| 2.7 退火温度的优化与标准曲线的建立 | 第106-107页 |
| 2.8 DPP-4、InsR、PI_3K、AKT、PKA、PKCα基因表达量的检测 | 第107页 |
| 3. 实验结果 | 第107-113页 |
| 3.1 RNA纯度和浓度检测 | 第107-108页 |
| 3.2 引物特异性检测 | 第108-109页 |
| 3.2 退火温度的优化 | 第109页 |
| 3.3 标准曲线及扩增效率 | 第109-110页 |
| 3.4 各组基因相对表达量 | 第110-113页 |
| 4. 讨论 | 第113-116页 |
| 4.1 荧光定量PCR | 第113-114页 |
| 4.2 二肽基肽酶-4(DPP-4) | 第114页 |
| 4.3 胰岛素受体(InsR) | 第114-115页 |
| 4.4 磷脂酰肌醇-3激酶(PI_3K)/蛋白激酶B(Akt)信号通路、蛋白激酶Ca亚型(PKCα)与蛋白激酶A(PKA) | 第115-116页 |
| 5. 小结 | 第116-117页 |
| 结论与创新 | 第117-118页 |
| 1. 结论 | 第117页 |
| 2. 创新性 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-126页 |
