| 摘要 | 第3-8页 |
| ABSTRACT | 第8-13页 |
| 缩略词对照表 | 第16-17页 |
| 引言 | 第17-20页 |
| 第一部分 自噬对缺氧诱导的心肌微血管内皮细胞间质转分化的调节及机制 | 第20-46页 |
| 1、实验材料与方法 | 第20-32页 |
| 1.1 人心脏微血管内皮细胞（HCMECs） | 第20页 |
| 1.2 主要试剂及产地 | 第20-22页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第22页 |
| 1.4 实验器械的准备及灭菌 | 第22页 |
| 1.5 主要实验试剂的配置 | 第22-24页 |
| 1.6 western blot中所用的一抗及使用方法 | 第24页 |
| 1.7 HCMECs的体外培养 | 第24-26页 |
| 1.8 缺氧诱导HCMECs发生End MT | 第26页 |
| 1.9 缺氧激活HCMECs自噬 | 第26-27页 |
| 1.10 干预自噬对缺氧诱导的End MT的影响 | 第27-28页 |
| 1.11 RNA的提取及RT-PCR | 第28-30页 |
| 1.12 Western blot | 第30-32页 |
| 1.13 双重免疫荧光染色 | 第32页 |
| 1.14 统计学分析 | 第32页 |
| 2.结果 | 第32-43页 |
| 2.1 HCMECs的生长特点 | 第32-33页 |
| 2.2 缺氧诱导HCMECs End MT | 第33-36页 |
| 2.3 缺氧诱导HCMECs自噬的变化 | 第36-38页 |
| 2.4 缺氧条件下干预自噬对EndMT的影响 | 第38-40页 |
| 2.5 缺氧状态下自噬调节End MT的机制 | 第40-43页 |
| 3.讨论 | 第43-46页 |
| 第二部分 自噬对心肌梗死后内皮细胞间质转分化及心肌纤维化的调节及机制 | 第46-57页 |
| 1.实验材与方法 | 第46-50页 |
| 1.1 动物 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂及产地 | 第46-47页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第47页 |
| 1.4 SD大鼠急性心肌梗死模型的制作 | 第47-48页 |
| 1.5 实验分组 | 第48页 |
| 1.6 SD大鼠心脏彩超 | 第48页 |
| 1.7 石蜡切片的制作 | 第48-49页 |
| 1.8 冰冻切片的制作 | 第49页 |
| 1.9 Masson’s trichrome染色 | 第49页 |
| 1.10 心脏组织双重免疫荧光染色 | 第49页 |
| 1.11 Western blot | 第49页 |
| 1.12 数据分析 | 第49-50页 |
| 2.结果 | 第50-55页 |
| 2.1 心肌梗死后干预自噬对心功能的影响 | 第50页 |
| 2.2 心肌梗死后干预自噬对梗死后心肌纤维化的影响 | 第50-52页 |
| 2.3 心肌梗死后梗死区域LC3的动态变化 | 第52页 |
| 2.4 心肌梗死后干预自噬对EndMT的影响 | 第52-54页 |
| 2.5 心肌梗死后干预自噬对心脏微血管内皮细胞自噬的变化 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55-57页 |
| 结论与展望 | 第57-58页 |
| 1、结论 | 第57页 |
| 2、展望与不足 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 综述 自噬在心室重构中的研究进展 | 第63-72页 |
| 1、引言 | 第63-64页 |
| 2、自噬在生理状态下对心脏的作用 | 第64-65页 |
| 3、自噬清除心脏变性的蛋白质 | 第65-66页 |
| 4、自噬清除心脏受损的细胞器 | 第66页 |
| 5、自噬与压力超负荷性心室重构 | 第66-68页 |
| 6、自噬与缺血性心室重构 | 第68-69页 |
| 7、自噬与糖尿病心肌病 | 第69页 |
| 8、自噬与心衰的治疗 | 第69-70页 |
| 9、结语 | 第70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
