摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
1 绪论 | 第9-27页 |
1.1 引言 | 第9页 |
1.2 尼罗蓝类染料的研究进展 | 第9-13页 |
1.2.1 尼罗蓝染料介绍 | 第9-10页 |
1.2.2 尼罗蓝染料的生物应用 | 第10-13页 |
1.3 亚细胞器荧光染色剂的研究进展 | 第13-26页 |
1.3.1 细胞核染料的研究进展 | 第13-19页 |
1.3.2 溶酶体染料的研究进展 | 第19-26页 |
1.4 论文选题背景及主要目标 | 第26-27页 |
2 基于尼罗蓝的溶酶体染料的设计合成及其生物成像应用 | 第27-46页 |
2.1 概述 | 第27-28页 |
2.2 染料分子设计和合成路线 | 第28-29页 |
2.2.1 分子设计 | 第28页 |
2.2.2 合成路线 | 第28-29页 |
2.3 实验部分 | 第29-31页 |
2.3.1 中间体1的合成 | 第29页 |
2.3.2 中间体2的合成 | 第29页 |
2.3.3 染料NBB的合成 | 第29-30页 |
2.3.4 染料NBC的合成 | 第30-31页 |
2.4 NBB和NBC的光谱测定方法 | 第31-33页 |
2.4.1 染料母液的制备 | 第31页 |
2.4.2 染料NBB和NBC在不同溶剂中的吸收发射光谱 | 第31页 |
2.4.3 染料NBB和NBC荧光量子产率的计算方法 | 第31页 |
2.4.4 染料NBB和NBC与LysoTracker Green的光稳定性对比测试 | 第31页 |
2.4.5 染料NBB和NBC的离子干扰性实验 | 第31-32页 |
2.4.6 NBB和NBC对MCF-7活细胞内染色 | 第32页 |
2.4.7 NBB、NBC与LysoTracker Green对MCF-7活细胞的复染 | 第32页 |
2.4.8 染料NBB和NBC的细胞毒性测试 | 第32-33页 |
2.4.9 染料NBC在Hela细胞凋亡过程中对溶酶体状态变化的荧光监测作用 | 第33页 |
2.4.10 染料NBC监测溶酶体在细胞分裂的不同时期产生的变化过程 | 第33页 |
2.5 结果与讨论 | 第33-45页 |
2.5.1 NBB/NBC的物理化学性质 | 第33-35页 |
2.5.2 NBB的基本光谱 | 第35页 |
2.5.3 NBC的基本光谱 | 第35页 |
2.5.4 pH对NBB和NBC荧光的影响 | 第35-36页 |
2.5.5 离子干扰性研究 | 第36-37页 |
2.5.6 NBB和NBC光稳定性测试 | 第37-38页 |
2.5.7 NBB和NBC在MCF-7细胞中的定位染色 | 第38-41页 |
2.5.8 NBC在多种细胞的定位染色 | 第41页 |
2.5.9 细胞毒性实验 | 第41-42页 |
2.5.10 NBC在MCF-7细胞中的低浓度快速染色 | 第42-43页 |
2.5.11 NBC监测Hela细胞凋亡过程中溶酶体的变化 | 第43-44页 |
2.5.12 NBC监测肝细胞凋亡过程中溶酶体“消失-重现”的变化过程 | 第44-45页 |
2.6 小结 | 第45-46页 |
3 以尼罗蓝为母体的近红外DNA定位荧光染料的合成及生物应用 | 第46-58页 |
3.1 背景介绍 | 第46-47页 |
3.2 探针分子设计与合成路线 | 第47-48页 |
3.2.1 分子设计 | 第47页 |
3.2.2 分子合成 | 第47-48页 |
3.3 实验部分 | 第48-50页 |
3.3.1 中间体3的合成 | 第48页 |
3.3.2 中间体4的合成 | 第48-49页 |
3.3.3 染料NBT的合成 | 第49-50页 |
3.4 染料NBT光谱和生物应用性能测试方法 | 第50页 |
3.5 结果与讨论 | 第50-57页 |
3.5.1 NBT的物理化学性质 | 第50-51页 |
3.5.2 NBT的基本光谱 | 第51页 |
3.5.3 pH对NBT荧光的影响 | 第51-52页 |
3.5.4 NBT光稳定性测试 | 第52-54页 |
3.5.5 细胞毒性实验 | 第54页 |
3.5.6 NBT在细胞中的定位染色 | 第54-55页 |
3.5.7 细胞消化实验 | 第55-56页 |
3.5.8 染料NBT对细胞分裂过程中不同时期DNA状态的成像 | 第56-57页 |
3.6 小结 | 第57-58页 |
结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-65页 |
附录 化合物结构表征 | 第65-73页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |