| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 成体神经发生的研究进展 | 第12-19页 |
| ·成体神经发生的存在区域 | 第12-13页 |
| ·成体神经发生的影响因素 | 第13-16页 |
| ·激素对成体神经发生的影响 | 第13-14页 |
| ·神经递质对成体神经发生的影响 | 第14页 |
| ·生长因子对成体神经发生的影响 | 第14-15页 |
| ·环境多样性对成体神经发生的影响 | 第15-16页 |
| ·成体神经发生的研究方法 | 第16-18页 |
| ·H-TdR 放射自显影技术 | 第16页 |
| ·BrdU 免疫组织化学技术 | 第16-17页 |
| ·DCX 标记免疫组织化学技术 | 第17-18页 |
| ·成体神经发生的研究前景 | 第18-19页 |
| 第二章 海马的结构分层及其纤维联系 | 第19-24页 |
| ·海马的解剖学结构 | 第19-20页 |
| ·海马的分层及细胞构筑 | 第20-23页 |
| ·齿状回的分层与细胞组成 | 第20-21页 |
| ·海马本部的分层与细胞组成 | 第21-23页 |
| ·海马结构内部纤维联系 | 第23-24页 |
| ·海马结构内部兴奋性纤维连接—三突触回路 | 第23页 |
| ·海马结构内部的抑制性纤维连接 | 第23-24页 |
| 第三章 以 DCX 标记技术来研究动物的成体神经发生的可行性 | 第24-28页 |
| ·材料与方法 | 第24-26页 |
| ·试剂与仪器 | 第24页 |
| ·实验动物与取材 | 第24页 |
| ·心脏灌注 | 第24-25页 |
| ·BrdU 注射 | 第25页 |
| ·震荡切片 | 第25页 |
| ·BrdU/DCX 荧光双标记（漂浮染色） | 第25-26页 |
| ·结果与分析 | 第26-27页 |
| ·BrdU/DCX 荧光双标记染色结果 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-28页 |
| 第四章 成年小鼠与猪的海马神经发生特点以及两者之间的差异 | 第28-34页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·试剂与仪器 | 第28页 |
| ·实验动物与取材 | 第28页 |
| ·小鼠心脏灌注 | 第28页 |
| ·猪海马取材 | 第28页 |
| ·DCX-DAB 免疫组织化学染色 | 第28-29页 |
| ·数据统计与分析 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-32页 |
| ·成年小鼠海马神经发生特点 | 第29-30页 |
| ·成年小鼠新生神经元突触联系的建立 | 第30页 |
| ·成年猪海马神经发生特点 | 第30-31页 |
| ·成年猪海马神经发生特点及其与小鼠的差异 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| 第五章 猪海马结构分层与细胞构筑 | 第34-40页 |
| ·材料与方法 | 第34-35页 |
| ·试剂与仪器 | 第34页 |
| ·猪海马 NeuN-DAB 的免疫组织化学染色 | 第34-35页 |
| ·猪海马 DCX/DAPI、GFAP/DAPI 荧光双标记 | 第35页 |
| ·结果与分析 | 第35-38页 |
| ·猪海马的结构分层及其各个分层的特点 | 第35-36页 |
| ·猪海马锥体细胞层及锥体细胞特点 | 第36-37页 |
| ·猪海马本部腔隙分子层特点 | 第37-38页 |
| ·猪海马齿状回多形层细胞特点 | 第38页 |
| ·讨论 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简介 | 第48页 |
