| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 1 材料和方法 | 第15-27页 |
| 1.1 试剂与仪器 | 第15-17页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第16-17页 |
| 1.2 材料的合成 | 第17-18页 |
| 1.2.1 4arm-PEG-PGE_2的合成 | 第17-18页 |
| 1.2.2 FITC荧光标记 4arm-PEG-PGE_2的制备 | 第18页 |
| 1.3 4arm-PEG-PGE_2的表征 | 第18-19页 |
| 1.3.1 基质辅助激光解析与离子化时间飞行质谱（MALDI-TOF） | 第18页 |
| 1.3.2 红外光谱（FT-IR） | 第18页 |
| 1.3.3 动态光散射（DLS） | 第18页 |
| 1.3.4 透射电镜（TEM）测定 | 第18-19页 |
| 1.4 细胞试验 | 第19-21页 |
| 1.4.1 H9c2细胞的培养 | 第19页 |
| 1.4.2 细胞毒性试验 | 第19-20页 |
| 1.4.3 体外溶血性试验 | 第20-21页 |
| 1.5 大鼠体内药代动力学实验 | 第21页 |
| 1.6 H9c2细胞缺氧模型的建立及与 4arm-PEG-PGE_2的共培养 | 第21-27页 |
| 1.6.1 H9c2细胞缺氧模型的建立 | 第21-22页 |
| 1.6.2 4arm-PEG-PGE_2对H9c2细胞缺氧模型存活率的测定 | 第22页 |
| 1.6.3 细胞形态的观察 | 第22-23页 |
| 1.6.4 细胞核形态的观察 | 第23页 |
| 1.6.5 细胞凋亡的测定 | 第23-24页 |
| 1.6.6 激光共聚焦显微镜测试 | 第24-25页 |
| 1.6.7 细胞内 4arm-PEG-PGE_2荧光强度的测定 | 第25页 |
| 1.6.8 细胞内乳酸脱氢酶释放的测定 | 第25-26页 |
| 1.6.9 细胞内caspase-3 活性的检测 | 第26-27页 |
| 2 结果 | 第27-41页 |
| 2.1 4arm-PEG-PGE_2的合成 | 第27-28页 |
| 2.1.1 基质辅助激光解析与离子化时间飞行质谱（MALDI-TOF） | 第27页 |
| 2.1.2 红外光谱（FT-IR） | 第27-28页 |
| 2.2 4arm-PEG-PGE_2聚合物胶束的表征 | 第28-30页 |
| 2.2.1 动态光散射（DLS） | 第28-29页 |
| 2.2.2 透射电镜（TEM）测定 | 第29-30页 |
| 2.3 细胞相容性 | 第30-32页 |
| 2.3.1 细胞毒性试验 | 第30页 |
| 2.3.2 体外溶血性试验 | 第30-32页 |
| 2.4 大鼠体内药代动力学特性 | 第32页 |
| 2.5 H9c2细胞缺氧模型的建立 | 第32-34页 |
| 2.6 4arm-PEG-PGE_2对H9c2细胞缺氧模型的作用评价 | 第34-38页 |
| 2.6.1 细胞存活率、凋亡率及形态学变化 | 第34-37页 |
| 2.6.2 细胞内LDH和caspase-3 的释放与活性 | 第37-38页 |
| 2.7 4arm-PEG-PGE_2的靶向专一性 | 第38-39页 |
| 2.8 细胞内4arm-PEG-PGE_2的荧光强度 | 第39-41页 |
| 3 讨论 | 第41-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第54-55页 |
| 综述 糖尿病心肌病的发病机制及最新研究进展 | 第55-67页 |
| 综述参考文献 | 第61-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
| 个人简历 | 第69页 |
