| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 缩略语 | 第18-20页 |
| 前言 | 第20-23页 |
| 研究现状、成果 | 第20-22页 |
| 研究目的、方法 | 第22-23页 |
| 一、大鼠在体心肌I/R损伤及IPC模型的建立 | 第23-35页 |
| 1.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第23页 |
| 1.1.3 实验器材与耗材 | 第23页 |
| 1.1.4 实验药品与试剂 | 第23-24页 |
| 1.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 1.2.1 主要溶液的配制 | 第24-25页 |
| 1.2.2 大鼠在体心肌I/R损伤及IPC模型的建立 | 第25页 |
| 1.2.3 实验分组与处理 | 第25-26页 |
| 1.2.4 模型成功与淘汰的标志 | 第26页 |
| 1.2.5 心血管指标测定 | 第26-27页 |
| 1.2.6 台盼蓝/TTC双染法测定心肌梗死面积 | 第27页 |
| 1.2.7 数据处理 | 第27页 |
| 1.3 结果 | 第27-34页 |
| 1.3.1 MAP | 第27页 |
| 1.3.2 HR | 第27-31页 |
| 1.3.3 ST-段 | 第31-33页 |
| 1.3.4 缺血期VA发生情况 | 第33页 |
| 1.3.5 心肌梗死面积 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、IPC-MVs的提取、表型鉴定及计数 | 第35-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第35页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第35页 |
| 2.1.3 实验耗材 | 第35页 |
| 2.1.4 实验药品与试剂 | 第35-36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-40页 |
| 2.2.1 主要溶液的配制及制备 | 第36-37页 |
| 2.2.2 实验分组及处理 | 第37页 |
| 2.2.3 循环血中 MVs 的提取 | 第37-38页 |
| 2.2.4 流式细胞术检测PFP中的MVs | 第38-40页 |
| 2.2.5 数据处理 | 第40页 |
| 2.3 结果 | 第40-46页 |
| 2.3.1 IPC-MVs的分析及数量变化 | 第40-41页 |
| 2.3.2 IPC组PFP中PMVs的表型鉴定及数量变化 | 第41-42页 |
| 2.3.3 IPC组PFP中EMVs的表型鉴定及数量变化 | 第42-44页 |
| 2.3.4 IPC组PFP中LMVs的表型鉴定及数量变化 | 第44-45页 |
| 2.3.5 IPC组PFP中RMVs的表型鉴定及数量变化 | 第45-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 三、IPC-MVs对I/R大鼠MAP, HR, ST-段水平及心肌组织坏死的影响 | 第47-60页 |
| 3.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第47页 |
| 3.1.3 实验耗材 | 第47页 |
| 3.1.4 实验试剂 | 第47页 |
| 3.2 实验方法 | 第47-50页 |
| 3.2.1 主要溶液的配制 | 第47页 |
| 3.2.2 IPC-MVs的蛋白定量 | 第47-48页 |
| 3.2.3 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第48-49页 |
| 3.2.4 心血管指标测定 | 第49页 |
| 3.2.5 血清LDH活力检测 | 第49-50页 |
| 3.2.6 台盼蓝/TTC双染法测定心肌梗死面积 | 第50页 |
| 3.2.7 HE染色法观察心肌形态 | 第50页 |
| 3.2.8 数据处理 | 第50页 |
| 3.3 结果 | 第50-59页 |
| 3.3.1 IPC-MVs的蛋白定量 | 第50-52页 |
| 3.3.2 MAP | 第52页 |
| 3.3.3 HR | 第52-55页 |
| 3.3.4 ST-段 | 第55页 |
| 3.3.5 缺血期VA发生情况 | 第55-57页 |
| 3.3.6 血清LDH活力 | 第57-58页 |
| 3.3.7 心肌梗死面积 | 第58页 |
| 3.3.8 心肌形态学变化 | 第58-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-60页 |
| 四、IPC-MVs对I/R大鼠心肌细胞凋亡的影响 | 第60-67页 |
| 4.1 实验材料 | 第60页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第60页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第60页 |
| 4.1.3 实验器材与耗材 | 第60页 |
| 4.1.4 药品与试剂 | 第60页 |
| 4.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 4.2.1 主要溶液的配制 | 第60页 |
| 4.2.2 IPC-MVs的蛋白定量 | 第60-61页 |
| 4.2.3 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第61页 |
| 4.2.4 TUNEL染色法检测心肌细胞凋亡 | 第61-62页 |
| 4.2.5 心肌组织Caspase 3 活力检测 | 第62-63页 |
| 4.2.6 数据处理 | 第63页 |
| 4.3 结果 | 第63-66页 |
| 4.3.1 心肌细胞AI | 第63-64页 |
| 4.3.2 心肌组织Caspase 3 活力 | 第64-66页 |
| 4.4 小结 | 第66-67页 |
| 五、IPC-MVs通过抑制ERS抗I/R大鼠心肌损伤 | 第67-74页 |
| 5.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第67页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第67页 |
| 5.1.3 实验器材与耗材 | 第67页 |
| 5.1.4 药品与试剂 | 第67-68页 |
| 5.2 实验方法 | 第68-71页 |
| 5.2.1 主要溶液的配制 | 第68-69页 |
| 5.2.2 IPC-MVs的蛋白定量 | 第69页 |
| 5.2.3 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第69-70页 |
| 5.2.4 心肌组织Caspase 12活力检测 | 第70页 |
| 5.2.5 Western Blot法检测心肌组织中GRP78及CHOP蛋白的表达 | 第70-71页 |
| 5.2.6 数据处理 | 第71页 |
| 5.3 结果 | 第71-73页 |
| 5.3.1 心肌组织Caspase 12活力 | 第71-72页 |
| 5.3.2 心肌组织GRP78及CHOP蛋白的表达 | 第72-73页 |
| 5.4 小结 | 第73-74页 |
| 讨论 | 第74-82页 |
| 1. IPC模型诱导大鼠在体产生IPC-MVs | 第74页 |
| 2. 大鼠循环血中IPC-MVs的提取与保存 | 第74-75页 |
| 2.1 IPC-MVs的分离 | 第74-75页 |
| 2.2 IPC-MVs的提取与保存 | 第75页 |
| 3. IPC-MVs的检测方法 | 第75-78页 |
| 3.1 IPC-MVs的流式检测 | 第76页 |
| 3.2 IPC-MVs的表型鉴定 | 第76-77页 |
| 3.3 IPC-MVs的数量变化 | 第77-78页 |
| 4. IPC-MVs对I/R大鼠心肌组织损伤的作用 | 第78-79页 |
| 4.1 MVs与IHD的关系 | 第78页 |
| 4.2 IPC-MVs改善I/R大鼠HR, ST-段水平并减轻心肌组织坏死程度 | 第78-79页 |
| 5. IPC-MVs对I/R大鼠心肌细胞凋亡的影响 | 第79页 |
| 5.1 MVs在细胞凋亡中扮演的角色 | 第79页 |
| 5.2 IPC-MVs对I/R大鼠心肌细胞凋亡的保护作用 | 第79页 |
| 6. IPC-MVs与ERS的关系 | 第79-81页 |
| 6.1 ERS概述 | 第79-80页 |
| 6.2 IPC-MVs发挥抗I/R大鼠心肌细胞凋亡作用与ERS的关系 | 第80-81页 |
| 7. 总结与展望 | 第81-82页 |
| 全文结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-92页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第92-93页 |
| 综述 细胞微囊泡的生物学特性 | 第93-105页 |
| 综述参考文献 | 第99-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 个人简历 | 第106页 |
