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伯克霍尔德菌的筛选、脂肪酶基因的克隆表达及酶学性质研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 文献综述第14-24页
    1.1 脂肪酶简介第14页
    1.2 脂肪酶的来源第14-15页
        1.2.1 动物脂肪酶第15页
        1.2.2 植物脂肪酶第15页
        1.2.3 微生物脂肪酶第15页
    1.3 脂肪酶的结构第15-17页
    1.4 脂肪酶催化机理与反应类型第17页
    1.5 脂肪酶的应用第17-20页
        1.5.1 应用于食品工业第18页
        1.5.2 应用于洗涤工业第18页
        1.5.3 应用于医药领域第18-19页
        1.5.4 应用于生物柴油的制取第19-20页
    1.6 微生物脂肪酶基因的研究第20-21页
    1.7 选题意义与目的第21页
    1.8 研究内容第21-23页
    1.9 技术路线第23-24页
第二章 产脂肪酶菌株的筛选及鉴定第24-33页
    2.1 前言第24-25页
    2.2 材料第25-26页
        2.2.1 样品第25页
        2.2.2 主要使用的试剂第25页
        2.2.3 培养基及主要仪器设备第25-26页
    2.3 实验方法第26-27页
        2.3.1 脂肪酶产生菌的筛选第26页
        2.3.2 菌株分子生物学鉴定第26-27页
            2.3.2.1 基因组DNA的提取第26页
            2.3.2.2 16S rDNA的扩增与TA克隆第26-27页
            2.3.2.3 阳性克隆的筛选第27页
            2.3.2.4 系统发育树的构建与分析第27页
    2.4 结果与讨论第27-31页
        2.4.1 脂肪酶产生菌的筛选结果第27-28页
        2.4.2 菌株分子生物学鉴定第28-31页
            2.4.2.1 菌株基因组DNA的提取和TA克隆第28-29页
            2.4.2.2 系统发育树的构建与分析第29-31页
    2.5 小结第31-33页
第三章 脂肪酶基因的克隆表达第33-60页
    3.1 前言第33-34页
    3.2 材料第34-37页
        3.2.1 菌株和质粒第34-36页
        3.2.2 主要用酶和试剂第36页
        3.2.3 培养基和溶液第36页
        3.2.4 引物序列第36-37页
        3.2.5 仪器设备第37页
    3.3 实验方法第37-46页
        3.3.1 同源性检索和引物设计第38页
        3.3.2 大肠杆菌感受态细胞的制备第38页
        3.3.3 聚合酶链式反应(PCR)扩增目的基因第38-40页
        3.3.4 产物lip-T添加A碱基及TA克隆第40-41页
        3.3.5 测序结果生物信息学分析第41页
        3.3.6 质粒提取第41页
        3.3.7 核酸电泳第41-42页
        3.3.8 目的片段和质粒的双酶切第42页
        3.3.9 纯化酶切后的目的片段第42-43页
        3.3.10 目的片段与载体连接第43页
        3.3.11 转化连接产物第43页
        3.3.12 筛选阳性克隆转化子第43页
        3.3.13 转重组质粒到表达菌株第43-44页
        3.3.14 重组质粒的诱导表达第44页
        3.3.15 SDS-PAGE蛋白质电泳检测第44页
        3.3.16 酶活力测定第44-45页
            3.3.16.1 样品酶活测定第44-45页
            3.3.16.2 对硝基苯酚(pNP)标准曲线的制作第45页
        3.3.17 重组表达条件的优化第45-46页
    3.4 结果与讨论第46-58页
        3.4.1 同源搜索与信号肽分析第46-47页
        3.4.2 基因的克隆与重组表达载体的构建第47-55页
            3.4.2.1 PCR产物第48页
            3.4.2.2 TA克隆重组质粒的筛选第48页
            3.4.2.3 测序结果及序列生物信息学分析第48-53页
            3.4.2.4 质粒的提取第53页
            3.4.2.5 目的片段和质粒双酶切第53-54页
            3.4.2.6 重组质粒的验证第54-55页
        3.4.3 酶活力初步测定第55页
        3.4.4 蛋白SDS-PAGE电泳第55-57页
        3.4.5 pNP标准曲线第57页
        3.4.6 表达条件的优化第57-58页
    3.5 小结第58-60页
第四章 脂肪酶变复性与蛋白纯化第60-69页
    4.1 前言第60-61页
    4.2 材料第61-62页
        4.2.1 主要试剂和溶液第61-62页
        4.2.2 主要仪器第62页
    4.3 实验方法第62-63页
        4.3.1 JDLipaseL包涵体的获得第62页
        4.3.2 JDLipaseL包涵体变复性处理第62页
        4.3.3 镍柱处理第62页
        4.3.4 JDLipaseL包涵体复性蛋白的纯化第62-63页
            4.3.4.1 纯化条件的摸索第62-63页
            4.3.4.2 纯化第63页
            4.3.4.3 脱盐浓缩第63页
            4.3.4.4 蛋白含量的测定第63页
    4.4 结果与讨论第63-67页
        4.4.1 Nano Drop 2000C测JDLipaseL包涵体溶解后蛋白浓度第63-64页
        4.4.2 洗脱条件的优化第64-66页
        4.4.3 纯化结果第66-67页
        4.4.4 蛋白含量标准曲线第67页
    4.5 小结第67-69页
第五章 脂肪酶酶学性质第69-79页
    5.1 前言第69页
    5.2 材料第69-70页
        5.2.1 试剂第69页
        5.2.2 主要缓冲液第69页
        5.2.3 仪器设备第69-70页
    5.3 实验方法第70-73页
        5.3.1 脂肪酶酶活力的测定第70页
        5.3.2 最适反应pH的测定第70页
        5.3.3 最适反应温度的测定第70页
        5.3.4 底物特异性分析第70-71页
        5.3.5 酶促动力学性质的测定第71页
        5.3.6 金属离子对酶活力的影响第71-72页
        5.3.7 有机溶剂对酶活力的影响第72页
        5.3.8 不同浓度甲醇对酶活力的影响第72-73页
    5.4 结果与讨论第73-78页
        5.4.1 酶活力测定第73页
        5.4.2 脂肪酶的最适反应pH第73-74页
        5.4.3 脂肪酶的最适反应温度第74页
        5.4.4 脂肪酶的底物特异性分析第74-75页
        5.4.5 脂肪酶的酶促动力学性质第75-76页
        5.4.6 金属离子对脂肪酶的影响第76页
        5.4.7 有机溶剂对脂肪酶的影响第76-77页
        5.4.8 不同浓度的甲醇对脂肪酶的影响第77-78页
    5.5 小结第78-79页
第六章 全文总结第79-81页
    6.1 结论第79-80页
    6.2 问题与展望第80-81页
参考文献第81-89页
附录第89-96页
    附录1 培养基、溶液和部分详细分子实验第89-92页
    附录2 仪器设备第92-94页
    附录3 计算机软件及网络资源第94-95页
    附录4 质粒序列和基因序列第95-96页
致谢第96-97页
攻读硕士学位期间发表的学术论文目录第97页

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