| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第16-30页 |
| 1.1 蛋清蛋白的生物活性 | 第16-19页 |
| 1.1.1 卵白蛋白的生物活性 | 第17页 |
| 1.1.2 卵转铁蛋白的生物活性 | 第17-18页 |
| 1.1.3 溶菌酶的生物活性 | 第18页 |
| 1.1.4 其他蛋清蛋白的生物活性 | 第18-19页 |
| 1.2 活性肽的研究现状 | 第19-22页 |
| 1.2.1 活性肽概述 | 第19-20页 |
| 1.2.2 活性肽的制备现状 | 第20-21页 |
| 1.2.3 蛋清蛋白肽的制备现状 | 第21-22页 |
| 1.3 氧化应激与慢性炎症 | 第22-28页 |
| 1.3.1 氧化应激 | 第22-23页 |
| 1.3.2 慢性炎症 | 第23-27页 |
| 1.3.3 抗氧化与抗炎的策略 | 第27-28页 |
| 1.4 立题背景及意义 | 第28-29页 |
| 1.5 本文研究内容 | 第29-30页 |
| 第2章 蛋清蛋白肽的辐照酶解制备技术研究 | 第30-44页 |
| 2.1 材料与设备 | 第30-31页 |
| 2.1.1 主要材料与试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 EBI处理蛋清蛋白 | 第31页 |
| 2.2.2 场发射扫描电子显微镜（SEM）扫描 | 第31页 |
| 2.2.3 中红外光谱（MIR）分析 | 第31-32页 |
| 2.2.4 低场核磁共振技术（LF-NMR）检测 | 第32页 |
| 2.2.5 经处理蛋清蛋白的酶解 | 第32-33页 |
| 2.2.6 酶解产物的安全性评价 | 第33页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与分析 | 第34-42页 |
| 2.3.1 EBI对EWP酶解效果的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.2 EBI对EWP的结构影响 | 第36-38页 |
| 2.3.3 EBI对EWP持水性与热变性的影响 | 第38-41页 |
| 2.3.4 EBI处理蛋清蛋白的酶解物的安全性评价 | 第41-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-43页 |
| 2.5 小结 | 第43-44页 |
| 第3章 蛋清蛋白肽的结构鉴定及体外抗氧化活性 | 第44-60页 |
| 3.1 材料与设备 | 第44-45页 |
| 3.1.1 主要材料与试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.2.1 蛋清蛋白酶解物的超滤 | 第45页 |
| 3.2.2 体外抗氧化活性评价 | 第45-46页 |
| 3.2.3 凝胶柱层析分离 | 第46-47页 |
| 3.2.4 蛋清蛋白肽的结构鉴定 | 第47页 |
| 3.2.5 蛋清蛋白肽的化学合成 | 第47页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第47-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-58页 |
| 3.3.1 超滤组分的体外抗氧化活性 | 第48-51页 |
| 3.3.2 蛋清蛋白肽组分的分离纯化及其自由基清除能力 | 第51-53页 |
| 3.3.3 蛋清蛋白肽组分的中红外光谱分析 | 第53-54页 |
| 3.3.4 蛋清蛋白肽组分的氨基酸成分分析 | 第54-55页 |
| 3.3.5 蛋清蛋白肽的结构鉴定 | 第55-57页 |
| 3.3.6 蛋清蛋白肽的体外抗氧化活性评价 | 第57-58页 |
| 3.4 小结 | 第58-60页 |
| 第4章 蛋清蛋白肽的细胞生物活性评价 | 第60-74页 |
| 4.1 材料与设备 | 第61-62页 |
| 4.1.1 主要材料与试剂 | 第61-62页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第62页 |
| 4.2 实验方法 | 第62-65页 |
| 4.2.1 细胞培养与分化 | 第62页 |
| 4.2.2 细胞抗氧化活性测定 | 第62-63页 |
| 4.2.3 氧化应激的诱导 | 第63页 |
| 4.2.4 细胞活力的测定 | 第63-64页 |
| 4.2.5 细胞内GSH含量的测定 | 第64页 |
| 4.2.6 脂质氧化测定 | 第64页 |
| 4.2.7 IL-8 含量测定 | 第64-65页 |
| 4.2.8 脂肪细胞炎症的诱导 | 第65页 |
| 4.2.9 细胞炎症因子的测定 | 第65页 |
| 4.2.10 统计分析 | 第65页 |
| 4.3 结果与分析 | 第65-73页 |
| 4.3.1 MPDAHL对细胞存活率的影响 | 第65-66页 |
| 4.3.2 MPDAHL的细胞抗氧化活性 | 第66-67页 |
| 4.3.3 MPDAHL对HT-29 细胞的抗氧化应激活性作用 | 第67-71页 |
| 4.3.4 MPDAHL对 3T3-L1细胞的抗炎活性作用 | 第71-73页 |
| 4.4 小结 | 第73-74页 |
| 第5章 蛋清蛋白对小鼠慢性炎症的抑制作用研究 | 第74-94页 |
| 5.1 材料与设备 | 第75-76页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第75-76页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第76页 |
| 5.2 实验方法 | 第76-79页 |
| 5.2.1 动物实验设计 | 第76-77页 |
| 5.2.2 葡萄糖耐量实验 | 第77页 |
| 5.2.3 血液各指标含量测定 | 第77页 |
| 5.2.4 脂肪组织的蛋白免疫印迹 | 第77-78页 |
| 5.2.5 小肠组织RNA提取与反转录 | 第78页 |
| 5.2.6 荧光实时定量PCR | 第78-79页 |
| 5.2.7 数据分析方法 | 第79页 |
| 5.3 结果与分析 | 第79-91页 |
| 5.3.1 小鼠摄食饮水量及体重变化 | 第79-80页 |
| 5.3.2 OVT对LPS诱导小鼠肝功能的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.3 OVT对LPS诱导小鼠血液中各炎症指标的影响 | 第81-84页 |
| 5.3.4 OVT对LPS诱导小鼠肠道慢性炎症的抑制作用 | 第84-87页 |
| 5.3.5 OVT对LPS诱导小鼠胰岛素抵抗的抑制作用 | 第87-91页 |
| 5.4 讨论 | 第91-93页 |
| 5.5 本章小结 | 第93-94页 |
| 第6章 蛋清蛋白肽的体内可吸收序列鉴定 | 第94-104页 |
| 6.1 材料与设备 | 第95-96页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第95页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第95-96页 |
| 6.2 实验方法 | 第96-97页 |
| 6.2.1 大鼠经口灌胃OVT | 第96页 |
| 6.2.2 血液样品前处理 | 第96-97页 |
| 6.2.3 MALDI-TOF-MS检测方法的建立 | 第97页 |
| 6.2.4 LC-TOF-MS检测方法的建立 | 第97页 |
| 6.2.5 数据分析 | 第97页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第97-103页 |
| 6.3.1 MALDI-TOF-MS对OVT经小肠消化吸收寡肽的检测 | 第97-100页 |
| 6.3.2 LC-TOF-MS对OVT经小肠消化吸收寡肽的检测 | 第100-103页 |
| 6.3.3 OVT源的可消化吸收寡肽序列的计算 | 第103页 |
| 6.4 小结 | 第103-104页 |
| 第7章 全文结论 | 第104-106页 |
| 创新点 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-130页 |
| 导师简介 | 第130-132页 |
| 作者简介及攻读博士学位期间所取得的科研成果 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
