| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-23页 |
| 1. 斑马鱼及其在科学研究中应用 | 第10-11页 |
| 2. 动物卵母细胞的体外促成熟研究进展 | 第11-16页 |
| 2.1 动物卵母细胞的成熟过程 | 第11-12页 |
| 2.2 影响卵母细胞体外成熟的因素 | 第12-13页 |
| 2.3 动物卵母细胞成熟的判断方法 | 第13-15页 |
| 2.4 动物卵母细胞体外成熟 | 第15-16页 |
| 3. 动物卵母细胞超低温冷冻保存技术研究进展 | 第16-22页 |
| 3.1 玻璃化冷冻保存技术 | 第16-17页 |
| 3.2 玻璃化冻存方法 | 第17-20页 |
| 3.3 冷冻保护剂 | 第20-21页 |
| 3.3.1 渗透性保护剂 | 第20页 |
| 3.3.2 非渗透性保护剂 | 第20-21页 |
| 3.4 超低温冷冻对动物卵母细胞损伤机理的研究 | 第21页 |
| 3.4.1 冰晶损伤（物理损伤） | 第21页 |
| 3.4.2 溶液效应（化学损伤） | 第21页 |
| 3.5 鱼类卵母细胞超低温冷冻保存研究进展 | 第21-22页 |
| 4. 论文研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 斑马鱼卵母细胞的体外成熟培养 | 第23-33页 |
| 1.引言 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1 药品与试剂 | 第24页 |
| 2.2 主要仪器 | 第24页 |
| 2.3 实验材料 | 第24页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第24-25页 |
| 2.5 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.6 统计分析 | 第26页 |
| 3. 实验结果 | 第26-33页 |
| 3.1 最佳亮甲酚蓝染色条件 | 第26-27页 |
| 3.2 17α-孕酮处理后卵母细胞的存活率 | 第27-28页 |
| 3.3 孕酮处理后卵母细胞的成熟情况 | 第28-30页 |
| 3.4.讨论 | 第30-33页 |
| 3.4.1 亮甲酚蓝染色法判断卵母细胞的成熟 | 第30-31页 |
| 3.4.2 孕酮对卵母细胞成熟的影响 | 第31-33页 |
| 第三章 斑马鱼卵母细胞玻璃化冻存条件的筛选 | 第33-39页 |
| 1 引言 | 第33-34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-37页 |
| 2.1 药品与试剂 | 第34-35页 |
| 2.2 主要仪器 | 第35页 |
| 2.3 实验材料 | 第35页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第35-36页 |
| 2.5 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.6 统计分析 | 第37页 |
| 3.实验结果 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 玻璃化冻存对斑马鱼卵母细胞线粒体ATP酶、谷胱甘肽的影响 | 第39-48页 |
| 1 引言 | 第39-41页 |
| 2.材料和方法 | 第41-42页 |
| 2.1 药品与试剂 | 第41页 |
| 2.2 主要仪器 | 第41页 |
| 2.3 实验方法 | 第41-42页 |
| 2.4 统计分析 | 第42页 |
| 3. 实验结果 | 第42-46页 |
| 3.1 玻璃化冻存对卵母细胞内线粒体ATP酶的影响 | 第42-45页 |
| 3.2 玻璃化冻存对卵母细胞谷胱甘肽的影响 | 第45-46页 |
| 4. 讨论 | 第46-48页 |
| 4.1 玻璃化冻存对鱼卵母细胞线粒体ATP酶活性的影响 | 第46-47页 |
| 4.2 玻璃化冻存对鱼卵母细胞谷胱甘肽含量的影响 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 附录 | 第58-59页 |
