| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩写词表 | 第10-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 肝癌研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 肝癌的现状与发病因素 | 第14-15页 |
| 1.1.2 肝癌的治疗与药物研发 | 第15-16页 |
| 1.2 FoxM1与肿瘤 | 第16-20页 |
| 1.2.1 FoxM1结构与功能 | 第16-17页 |
| 1.2.2 FoxM1介导的肿瘤相关生物进程和信号通路 | 第17-19页 |
| 1.2.3 FoxM1介导的化药耐药相关 | 第19-20页 |
| 1.2.4 FoxM1与肝癌 | 第20页 |
| 1.3 FoxM1与分子靶向治疗 | 第20-24页 |
| 1.3.1 分子靶向治疗研究现状 | 第20-23页 |
| 1.3.2 靶向FoxM1与肿瘤 | 第23-24页 |
| 1.4 课题研究目的、意义和内容 | 第24-26页 |
| 1.4.1 本课题的研究目的和意义 | 第24页 |
| 1.4.2 本课题的研究内容 | 第24-25页 |
| 1.4.3 本课题创新点 | 第25-26页 |
| 第2章 9R-P201选择性抑制HEPG2细胞的增殖、迁移与侵袭以及诱导凋亡作用 | 第26-52页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 实验材料 | 第26-31页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.2 细胞株 | 第27页 |
| 2.2.3 主要试剂与耗材 | 第27-28页 |
| 2.2.4 主要试剂配制 | 第28-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-39页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第31页 |
| 2.3.2 小鼠脾脏细胞提取 | 第31-32页 |
| 2.3.3 多肽9R-P201对人不同癌细胞株、人正常肝细胞以及小鼠脾脏细胞的活力影响 | 第32页 |
| 2.3.4 多肽9R-P201胞内作用位置确定 | 第32-33页 |
| 2.3.5 吖啶橙(AO)/溴化乙锭(EB)荧光双染 | 第33页 |
| 2.3.6 平板克隆形成实验 | 第33页 |
| 2.3.7 细胞划痕实验 | 第33页 |
| 2.3.8 Transwell小室迁移实验 | 第33-34页 |
| 2.3.9 qRT-PCR检测相应mRNA表达 | 第34-36页 |
| 2.3.10 Western blot检测相应蛋白表达 | 第36-39页 |
| 2.3.11 统计学分析 | 第39页 |
| 2.4 实验结果 | 第39-49页 |
| 2.4.1 多肽9R-P201有效抑制肝癌细胞HepG2的活力 | 第39-41页 |
| 2.4.2 多肽9R-P201与FoxM1表达的调控关系 | 第41-44页 |
| 2.4.3 多肽9R-P201诱导肝癌细胞HepG2的凋亡 | 第44页 |
| 2.4.4 多肽9R-P201抑制癌细胞HepG2的增殖与迁移 | 第44-49页 |
| 2.5 讨论 | 第49-51页 |
| 2.6 本章小结 | 第51-52页 |
| 第3章 9R-P201有效抑制裸鼠HEPG2移植瘤的生长以及诱导凋亡作用 | 第52-60页 |
| 3.1 引言 | 第52页 |
| 3.2 实验材料 | 第52-53页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第52页 |
| 3.2.2 细胞株与动物 | 第52页 |
| 3.2.3 主要试剂与耗材 | 第52-53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.3.1 多肽9R-P201溶血性评价 | 第53页 |
| 3.3.2 裸鼠HepG2移植瘤实验 | 第53-55页 |
| 3.4 实验结果 | 第55-58页 |
| 3.4.1 多肽9R-P201的溶血性评价 | 第55页 |
| 3.4.2 多肽9R-P201有效抑制HepG2移植瘤的生长 | 第55-58页 |
| 3.5 讨论 | 第58-59页 |
| 3.6 本章小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第70页 |
