| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 我国造纸工业用水现状及发展趋势 | 第12-13页 |
| 1.1.1 我国造纸工业用水现状 | 第12页 |
| 1.1.2 我国造纸工业用水发展趋势 | 第12-13页 |
| 1.2 白水中污染物的主要污染物及不良影响 | 第13-15页 |
| 1.2.1 造纸白水主要污染物 | 第14页 |
| 1.2.2 造纸白水中DCS的不良影响 | 第14-15页 |
| 1.3 白水DCS的物理和化学控制法 | 第15-16页 |
| 1.4 白水DCS生物酶控制法 | 第16-20页 |
| 1.4.1 生物酶的结构与特性及其作用机理 | 第16页 |
| 1.4.2 脂肪酶降解白水树脂类物质 | 第16-19页 |
| 1.4.3 果胶酶控制白水阴离子垃圾 | 第19-20页 |
| 1.5 全细胞生物催化技术 | 第20-23页 |
| 1.5.1 全细胞生物催化技术简介 | 第20-22页 |
| 1.5.2 全细胞催化剂及产脂肪酶和果胶酶微生物的来源 | 第22页 |
| 1.5.3 全细胞催化剂的应用 | 第22-23页 |
| 1.6 固定化全细胞 | 第23-24页 |
| 1.6.1 固定化全细胞简介 | 第23页 |
| 1.6.2 全细胞的固定化方法 | 第23-24页 |
| 1.7 本研究的主要内容和意义 | 第24-27页 |
| 1.7.1 本研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 1.7.2 本研究的意义 | 第25-26页 |
| 1.7.3 本研究的技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 米曲霉全细胞催化剂处理造纸白水树脂 | 第27-40页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第27-28页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第28页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 2.3.1 诱导剂对米曲霉全细胞中脂肪酶酶活的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.2 反应温度对米曲霉全细胞催化降解TG的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.4 反应pH对米曲霉全细胞催化降解TG的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.5 反应底物浓度对米曲霉全细胞催化降解TG的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.6 摇床转速对米曲霉全细胞催化降解TG的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.7 米曲霉全细胞，游离脂肪酶和固定化脂肪酶酶催化分解TG的对比研究 | 第36页 |
| 2.3.8 米曲霉全细胞处理白水树脂沉积物的实践研究 | 第36-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 黑曲霉全细胞催化剂处理造纸白水阴离子垃圾的研究 | 第40-53页 |
| 3.1 引言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-43页 |
| 3.2.1 实验原料 | 第41页 |
| 3.2.2 黑曲霉全细胞的制备 | 第41页 |
| 3.2.3 果胶酶活力的测定 | 第41-42页 |
| 3.2.4 阳离子需求量的测定 | 第42页 |
| 3.2.5 反应用量，反应温度和反应时间对黑曲霉全细胞催化活性的影响 | 第42页 |
| 3.2.6 PGA平均分子量的测定 | 第42-43页 |
| 3.2.7 黑曲霉全细胞处理白水的研究 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 3.3.1 黑曲霉全细胞和碱性果胶酶的催化PGA的分解活性的研究 | 第43-44页 |
| 3.3.2 黑曲霉全细胞的用量对分解PGA的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.3 反应温度对黑曲霉全细包降解PGA的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.4 反应时间对黑曲霉全细胞及失活黑曲霉全细胞处理PGA溶液的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.5 黑曲霉全细胞降解PGA的研究 | 第47-48页 |
| 3.3.6 黑曲霉全细胞的操作稳定性的研究 | 第48-49页 |
| 3.3.7 黑曲霉全细胞处理造纸工厂白水的研究 | 第49-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 固定化黑曲霉处理造纸白水的研究 | 第53-63页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 实验部分 | 第53-55页 |
| 4.2.1 实验原料 | 第53-54页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第54页 |
| 4.2.3 黑曲霉菌种发酵培养 | 第54页 |
| 4.2.4 黑曲霉细胞的固定化[90] | 第54页 |
| 4.2.5 黑曲霉全细胞果胶酶活力的测定 | 第54页 |
| 4.2.6 固定化黑曲霉全细胞果胶酶活力的测定 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-62页 |
| 4.3.1 海藻酸钠浓度对固定化效果的影响 | 第55-57页 |
| 4.3.2 CaCl2浓度对固定化效果的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.3 时间对固定化效果的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.4 反应时间对固定化黑曲霉全细胞处理PGA溶液的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.5 反应温度对固定化黑曲霉全细胞处理PGA溶液的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.6 固定化黑曲霉全细胞的操作稳定性的研究 | 第61-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 结论与展望 | 第63-65页 |
| 主要结论 | 第63-64页 |
| 论文创新点 | 第64页 |
| 研究展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 附件 | 第74页 |
