| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 缩略词索引表 | 第22-23页 |
| 第一章 绪论 | 第23-51页 |
| 1.1 引言 | 第23-24页 |
| 1.2 NO的性质 | 第24-25页 |
| 1.2.1 NO的物理性质 | 第24页 |
| 1.2.2 NO的化学性质 | 第24-25页 |
| 1.3 NO生物活性的发现 | 第25页 |
| 1.4 NO的生物合成 | 第25-26页 |
| 1.4.1 酶合成途径 | 第25-26页 |
| 1.4.2 非酶合成途径 | 第26页 |
| 1.5 NO在人体里的化学反应 | 第26-28页 |
| 1.5.1 与金属离子作用 | 第26-27页 |
| 1.5.2 与超氧化物反应 | 第27页 |
| 1.5.3 与巯基作用 | 第27页 |
| 1.5.4 二磷酸腺苷(ADP)-核糖化 | 第27-28页 |
| 1.5.5 NO在体内的清除或失活 | 第28页 |
| 1.6 NO的生理作用 | 第28页 |
| 1.7 生物体内NO分析研究进展 | 第28-35页 |
| 1.7.1 生物体内NO的分析方法 | 第28-35页 |
| 1.7.1.1 分光光度法 | 第29-30页 |
| 1.7.1.2 化学发光法 | 第30-31页 |
| 1.7.1.3 电化学分析法 | 第31-32页 |
| 1.7.1.4 催化光度法 | 第32-33页 |
| 1.7.1.5 色谱分析法 | 第33-35页 |
| 1.8 样品前处理技术 | 第35-48页 |
| 1.8.1 浊点萃取技术 | 第35-39页 |
| 1.8.1.1 浊点萃取技术概述 | 第35-36页 |
| 1.8.1.2 浊点萃取技术基本原理 | 第36-37页 |
| 1.8.1.3 浊点萃取的影响因素 | 第37-39页 |
| 1.8.2 分散液液微萃取 | 第39-44页 |
| 1.8.2.1 分散液液微萃取技术原理概述 | 第39-40页 |
| 1.8.2.2 分散液液微萃取剂分类 | 第40-42页 |
| 1.8.2.3 DLLME在生物样品分析中的应用 | 第42-44页 |
| 1.8.3 双水相萃取技术 | 第44-46页 |
| 1.8.3.1 双水相萃取技术概述 | 第44页 |
| 1.8.3.2 双水相萃取原理 | 第44-45页 |
| 1.8.3.3 双水相体系的分类以及成相原理 | 第45页 |
| 1.8.3.4 双水相体系的应用 | 第45-46页 |
| 1.8.4 衍生化技术 | 第46-47页 |
| 1.8.5 环糊精荧光增敏技术 | 第47-48页 |
| 1.9 论文的研究意义、主要内容和技术路线 | 第48-51页 |
| 1.9.1 论文的研究意义和主要内容 | 第48-50页 |
| 1.9.2 论文的技术路线图 | 第50-51页 |
| 第二章 反相离子对高效液相色谱法同时测定血液、尿液中NO_3~-和NO_2~-含量 | 第51-66页 |
| 2.1 引言 | 第51-52页 |
| 2.2 实验部分 | 第52-54页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第52页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第52页 |
| 2.2.3 色谱条件 | 第52-53页 |
| 2.2.4 溶液的配制 | 第53页 |
| 2.2.5 样品采集及制备 | 第53-54页 |
| 2.2.6 NO_2~-重氮化偶合反应 | 第54页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第54-61页 |
| 2.3.1 检测波长的选择 | 第54-55页 |
| 2.3.2 色谱条件的优化 | 第55页 |
| 2.3.3 蛋白沉淀剂的选择 | 第55-57页 |
| 2.3.4 反相离子对色谱保留因素的优化 | 第57-59页 |
| 2.3.4.1 离子对试剂的选择 | 第57-58页 |
| 2.3.4.2 离子对试剂浓度的影响 | 第58-59页 |
| 2.3.4.3 流动相的pH的影响 | 第59页 |
| 2.3.5 NO_2~-重氮化偶合反应的优化 | 第59-61页 |
| 2.3.5.1 酸度的影响 | 第59-60页 |
| 2.3.5.2 对氨基苯磺酸用量的影响 | 第60页 |
| 2.3.5.3 1-萘胺用量的影响 | 第60页 |
| 2.3.5.4 反应时间及稳定性试验 | 第60-61页 |
| 2.4 方法验证 | 第61-64页 |
| 2.4.1 线性范围、检出限和定量限 | 第61-62页 |
| 2.4.2 回收率和精密度 | 第62页 |
| 2.4.3 方法的比较 | 第62-63页 |
| 2.4.4 实际样品分析 | 第63-64页 |
| 2.4.5 共存离子的影响 | 第64页 |
| 2.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第三章 浊点萃取(CPE)-酶标仪比色法检测血液、尿液中NO_2~-的研究 | 第66-78页 |
| 3.1 引言 | 第66页 |
| 3.2 实验部分 | 第66-69页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第66-67页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第67页 |
| 3.2.3 溶液的配制 | 第67页 |
| 3.2.4 样品前处理 | 第67-68页 |
| 3.2.5 NO_2~-重氮化偶合反应 | 第68页 |
| 3.2.6 浊点萃取过程 | 第68-69页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第69-74页 |
| 3.3.1 血浆蛋白沉淀及脱色技术的优化 | 第69页 |
| 3.3.2 尿液脱色技术的优化 | 第69-71页 |
| 3.3.3 浊点萃取条件的优化 | 第71-73页 |
| 3.3.3.1 非离子表面活性剂Triton X-114的浓度 | 第71页 |
| 3.3.3.2 盐种类和加入量的影响 | 第71-72页 |
| 3.3.3.3 相平衡温度和时间 | 第72-73页 |
| 3.3.3.4 离心的影响 | 第73页 |
| 3.3.4 酶标仪测定波长的选择 | 第73-74页 |
| 3.4 方法验证 | 第74-77页 |
| 3.4.1 干扰实验 | 第74-75页 |
| 3.4.2 标准工作曲线的制作及方法特征性考察 | 第75页 |
| 3.4.3 方法比较 | 第75-76页 |
| 3.4.4 回收率和精密度 | 第76-77页 |
| 3.5 本章小结 | 第77-78页 |
| 第四章 邻苯二胺衍生化-羟丙-β-环糊精包合NO_2~-荧光分析方法的研究 | 第78-91页 |
| 4.1 引言 | 第78页 |
| 4.2 实验部分 | 第78-80页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第78-79页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第79页 |
| 4.2.3 试剂及配制 | 第79页 |
| 4.2.4 样本采集与制备 | 第79-80页 |
| 4.2.5 衍生化及包合过程 | 第80页 |
| 4.2.6 双水相萃取过程 | 第80页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第80-86页 |
| 4.3.1 分子光谱分析 | 第80-81页 |
| 4.3.2 衍生化条件的优化 | 第81-83页 |
| 4.3.2.1 溶液酸度和碱度的影响 | 第81-82页 |
| 4.3.2.2 OPD浓度的影响 | 第82页 |
| 4.3.2.3 衍生化温度和时间的影响 | 第82-83页 |
| 4.3.3 包合条件的优化 | 第83-84页 |
| 4.3.3.1 环糊精的种类和浓度 | 第83-84页 |
| 4.3.3.2 包合温度的影响 | 第84页 |
| 4.3.4 双水相萃取过程的优化 | 第84-86页 |
| 4.3.4.1 有机溶剂种类及用量的影响 | 第85页 |
| 4.3.4.2 盐种类及用量的影响 | 第85-86页 |
| 4.4 方法验证 | 第86-90页 |
| 4.4.1 线性范围、检出限和定量限 | 第86-87页 |
| 4.4.2 回收率和精密度 | 第87-88页 |
| 4.4.3 方法比较 | 第88页 |
| 4.4.4 HP-β-CD包合物的形成机理 | 第88-89页 |
| 4.4.5 包合比和包合常数的测定 | 第89-90页 |
| 4.5 本章小结 | 第90-91页 |
| 第五章 表面活性剂增强乳化分散液液微萃取-酶标仪光度法测定NO_2~-分析方法的研究 | 第91-102页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 实验部分 | 第92-95页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第92页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第92-93页 |
| 5.2.3 试剂的配制 | 第93页 |
| 5.2.4 样本采集与制备 | 第93-94页 |
| 5.2.5 NO_2~-重氮化偶合反应 | 第94页 |
| 5.2.6 表面活性剂增强乳化分散液液微萃取 | 第94-95页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第95-99页 |
| 5.3.1 吸收光谱 | 第95页 |
| 5.3.2 萃取条件的优化 | 第95-99页 |
| 5.3.2.1 萃取剂种类的影响 | 第96页 |
| 5.3.2.2 萃取剂体积的影响 | 第96-97页 |
| 5.3.2.3 表面活性剂种类的影响 | 第97-98页 |
| 5.3.2.4 表面活性剂用量的影响 | 第98-99页 |
| 5.3.2.5 手摇时间的影响 | 第99页 |
| 5.3.2.6 离心时间的影响 | 第99页 |
| 5.4 方法评价 | 第99-101页 |
| 5.4.1 干扰实验 | 第100页 |
| 5.4.2 方法的比较 | 第100-101页 |
| 5.5 本章小结 | 第101-102页 |
| 第六章 新型硝酸盐、亚硝酸盐快速检测试剂盒的研究 | 第102-111页 |
| 6.1 引言 | 第102页 |
| 6.2 实验部分 | 第102-109页 |
| 6.2.1 主要试剂 | 第102-103页 |
| 6.2.2 主要仪器 | 第103页 |
| 6.2.3 试剂盒的开发及操作步骤 | 第103-109页 |
| 6.2.3.1 开发新型检测试剂盒理论基础 | 第103页 |
| 6.2.3.2 定量原理 | 第103-104页 |
| 6.2.3.3 硝酸盐还原酶的研制 | 第104-107页 |
| 6.2.3.4 硝酸盐与亚硝酸盐快速检测试剂盒的组成(48样) | 第107-108页 |
| 6.2.3.5 硝酸盐与亚硝酸盐快速检测试剂盒操作步骤 | 第108-109页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第109-110页 |
| 6.4 本章小结 | 第110-111页 |
| 第七章 不同海拔的变化对体内NO_3~-和NO_2~-含量的影响 | 第111-118页 |
| 7.1 引言 | 第111页 |
| 7.2 实验部分 | 第111-113页 |
| 7.2.1 主要试剂 | 第111页 |
| 7.2.2 主要仪器 | 第111-112页 |
| 7.2.3 调查对象 | 第112页 |
| 7.2.4 调查内容 | 第112页 |
| 7.2.4.1 人口学基本资料 | 第112页 |
| 7.2.4.2 体格检查 | 第112页 |
| 7.2.5 血清样本的采集和保存 | 第112-113页 |
| 7.2.6 签署知情同意书 | 第113页 |
| 7.2.7 血浆中NO_3~-、NO_2~-的测定 | 第113页 |
| 7.2.8 统计学处理 | 第113页 |
| 7.3 结果 | 第113-117页 |
| 7.3.1 调查对象人口学的一般资料 | 第113-114页 |
| 7.3.2 血浆NO_3~-/NO_2~-含量影响因素分析 | 第114-117页 |
| 7.4 本章小结 | 第117-118页 |
| 第八章 结论与展望 | 第118-121页 |
| 8.1 结论 | 第118-119页 |
| 8.2 创新点 | 第119-120页 |
| 8.3 展望 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-143页 |
| 附录A 攻读博士期间科研成果及奖励目录 | 第143-144页 |
