| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-22页 |
| 1 中药多糖的理化性质 | 第13页 |
| 2 不同来源多糖的研究 | 第13-15页 |
| 2.1 微生物来源多糖 | 第14页 |
| 2.2 动物来源多糖 | 第14页 |
| 2.3 植物来源多糖 | 第14-15页 |
| 3 多糖的提取工艺研究 | 第15-16页 |
| 3.1 热水提取法及酸、碱提取法 | 第15页 |
| 3.2 超声波提取法 | 第15-16页 |
| 3.3 微波提取法 | 第16页 |
| 3.4 酶法 | 第16页 |
| 4 中药多糖的纯化 | 第16-19页 |
| 4.1 多糖的脱蛋白 | 第17页 |
| 4.2 多糖的脱色 | 第17-18页 |
| 4.2.1 双氧水脱色法 | 第17-18页 |
| 4.2.2 活性炭脱色法 | 第18页 |
| 4.2.3 大孔吸附树脂法 | 第18页 |
| 4.3 去除小分子 | 第18页 |
| 4.4 多糖的分级研究 | 第18-19页 |
| 5 多糖分子量与药效的关系及其测定方法 | 第19-20页 |
| 6 中药多糖的免疫调节作用研究 | 第20页 |
| 7 本课题研究的意义 | 第20-22页 |
| 7.1 蓝耳病的介绍及其危害 | 第20-21页 |
| 7.2 本课题研究的中药多糖在防治蓝耳病中的预期应用 | 第21-22页 |
| 第一章 复方蓝芪多糖的提取工艺研究 | 第22-33页 |
| 1 仪器与试药 | 第22-23页 |
| 1.1 试剂与试药 | 第22页 |
| 1.2 仪器 | 第22-23页 |
| 2 方法与结果 | 第23-32页 |
| 2.1 药材预处理 | 第23页 |
| 2.2 多糖含量测定方法的建立 | 第23-27页 |
| 2.2.1 溶液的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.2 最大吸收波长的扫描 | 第24页 |
| 2.2.3 苯酚-硫酸法测定多糖含量 | 第24页 |
| 2.2.4 线性关系考察 | 第24-25页 |
| 2.2.5 重复性试验 | 第25页 |
| 2.2.6 溶液稳定性试验 | 第25-26页 |
| 2.2.7 回收率试验 | 第26页 |
| 2.2.8 样品测定 | 第26-27页 |
| 2.3 多糖提取工艺单因素考察 | 第27-29页 |
| 2.3.1 提取次数对多糖提取率的影响 | 第27页 |
| 2.3.2 提取温度对多糖提取率的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.3 提取时间对多糖提取率的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.4 溶剂用量对多糖提取率的影响 | 第29页 |
| 2.4 多糖提取工艺的优化 | 第29-31页 |
| 2.5 多糖最佳提取工艺验证试验 | 第31-32页 |
| 3 本章小结 | 第32-33页 |
| 第二章 复方蓝芪总多糖的纯化工艺研究 | 第33-52页 |
| 1 仪器与试药 | 第33-34页 |
| 1.1 试剂与试药 | 第33页 |
| 1.2 仪器 | 第33-34页 |
| 2 方法与结果 | 第34-50页 |
| 2.1 蛋白质含量测定方法的建立 | 第34-36页 |
| 2.1.1 溶液配制 | 第34页 |
| 2.1.2 考马斯亮蓝法测定蛋白质含量 | 第34-35页 |
| 2.1.3 线性关系考察 | 第35页 |
| 2.1.4 溶液稳定性试验 | 第35页 |
| 2.1.5 重复性试验 | 第35-36页 |
| 2.2 色素含量测定方法 | 第36页 |
| 2.3 蓝芪多糖纯化方法的筛选 | 第36-40页 |
| 2.3.1 树脂法 | 第36-39页 |
| 2.3.2 双氧水脱色法 | 第39页 |
| 2.3.3 活性炭脱色法 | 第39-40页 |
| 2.4 活性炭纯化工艺的研究 | 第40-47页 |
| 2.4.1 活性炭纯化工艺的单因素试验 | 第40-43页 |
| 2.4.2 活性炭纯化工艺正交试验 | 第43-45页 |
| 2.4.3 验证试验 | 第45-46页 |
| 2.4.4 活性炭法多次脱色研究 | 第46-47页 |
| 2.5 多糖冻融工艺的考察 | 第47-49页 |
| 2.6 多糖透析工艺的研究 | 第49页 |
| 2.6.1 透析袋预处理 | 第49页 |
| 2.6.2 多糖的透析 | 第49页 |
| 2.7 多糖的冻干 | 第49-50页 |
| 3 本章小结 | 第50-52页 |
| 第三章 复方蓝芪多糖的分级及分子量测定 | 第52-64页 |
| 1 试药与仪器 | 第52-53页 |
| 1.1 试剂与试药 | 第52-53页 |
| 1.2 仪器 | 第53页 |
| 2 方法与结果 | 第53-62页 |
| 2.1 凝胶色谱柱纯化精制多糖 | 第53-56页 |
| 2.1.1 DEAE-Sephadex A50型凝胶纯化精制蓝芪多糖 | 第53-54页 |
| 2.1.2 Sephadex G100型葡聚糖凝胶纯化精制多糖 | 第54-56页 |
| 2.1.3 紫外图谱鉴定精制多糖的纯度 | 第56页 |
| 2.2 多糖分子量测定方法的建立 | 第56-62页 |
| 2.2.1 溶液的配制 | 第56-57页 |
| 2.2.2 液相色谱条件 | 第57页 |
| 2.2.3 多糖分子量标准曲线的测定 | 第57-59页 |
| 2.2.4 精密度试验 | 第59页 |
| 2.2.5 溶液稳定性试验 | 第59-60页 |
| 2.2.6 多糖样品分子量测定 | 第60-62页 |
| 3 本章小结 | 第62-64页 |
| 第四章 复方蓝芪总多糖的免疫药效学初步研究 | 第64-70页 |
| 1 实验材料 | 第64-65页 |
| 1.1 实验动物 | 第64页 |
| 1.2 试剂与试药 | 第64页 |
| 1.3 仪器 | 第64-65页 |
| 2 实验方法与结果 | 第65-68页 |
| 2.1 小鼠碳粒廓清实验 | 第65-67页 |
| 2.1.1 药物溶液的配制 | 第65页 |
| 2.1.2 实验操作 | 第65-66页 |
| 2.1.3 数据统计方法 | 第66页 |
| 2.1.4 实验结果 | 第66-67页 |
| 2.2 迟发型超敏反应（耳肿胀实验） | 第67-68页 |
| 2.2.1 药物溶液的配制 | 第67页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第67-68页 |
| 2.2.3 数据统计方法 | 第68页 |
| 2.2.4 实验结果 | 第68页 |
| 3 本章小结 | 第68-70页 |
| 全文总结 | 第70-72页 |
| 1 结论 | 第70-71页 |
| 2 创新点 | 第71页 |
| 3 展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
