中文摘要 | 第13-15页 |
ABSTRACT | 第15-17页 |
第一章 综述 | 第18-26页 |
1 脊椎动物肠道及消化系统研究进展 | 第18-20页 |
2 白细胞介素6研究进展 | 第20-23页 |
2.1 IL6的发现 | 第21页 |
2.2 IL6的结构 | 第21页 |
2.3 IL6的多效功能 | 第21-22页 |
2.4 IL6参与肠道免疫调节 | 第22页 |
2.5 IL6受体及相关信号通路 | 第22页 |
2.6 其他物种IL6研究进展 | 第22-23页 |
3 外界环境变化对动物免疫系统的影响 | 第23-24页 |
4 本论文的研究内容及研究意义 | 第24-26页 |
4.1 研究内容 | 第24页 |
4.2 研究意义 | 第24-26页 |
第二章 采用分子标记法区分中华鳖肠道结构并比较与形态学结构的不同 | 第26-44页 |
1 材料与方法 | 第27-31页 |
1.1 中华鳖的养殖及取样 | 第27-28页 |
1.2 主要试剂 | 第28页 |
1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
1.4 中华鳖肠道形态学观察和石蜡切片及HE染色 | 第29-30页 |
1.5 总RNA提取与cDNA合成 | 第30页 |
1.6 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
1.7 数据分析 | 第31页 |
2 结果 | 第31-39页 |
2.1 肠道内表面形态观察 | 第31-32页 |
2.2 肠道组织各段组织学切片观察及肠绒毛长度和肠壁厚度统计 | 第32-34页 |
2.3 肠道各段分子标记区分 | 第34-38页 |
2.4 中华鳖与其他物种各段标记基因表达量比较 | 第38-39页 |
3 讨论 | 第39-44页 |
第三章 中华鳖il6全长cDNA克隆和生物信息学分析及组织表达模式分析 | 第44-62页 |
1 材料与方法 | 第45-48页 |
1.1 实验动物及取材 | 第45页 |
1.2 主要试剂 | 第45页 |
1.3 主要仪器 | 第45页 |
1.4 总RNA提取 | 第45-46页 |
1.5 il6全长cDNA的克隆 | 第46页 |
1.6 生物信息学分析 | 第46-47页 |
1.7 cDNA合成及实时荧光定量PCR | 第47页 |
1.8 定量PCR检测il6在各组织中的表达模式分析 | 第47-48页 |
1.9 统计分析 | 第48页 |
2 结果 | 第48-59页 |
2.1 中华鳖il6基因启动子转录因子结合位点预测 | 第48-49页 |
2.2 中华鳖il6全长cDNA获得及序列分析 | 第49-52页 |
2.3 中华鳖il6结构分析 | 第52-53页 |
2.4 中华鳖il6基因共线性关系分析 | 第53页 |
2.5 中华鳖il6相似性和一致性分析 | 第53-54页 |
2.6 中华鳖il6编码的蛋白特征和结构预测及系统进化树构建 | 第54-58页 |
2.7 中华鳖il6的组织特异性分布 | 第58-59页 |
3 讨论 | 第59-62页 |
第四章 免疫刺激及急性低温胁迫对中华鳖免疫因子il6表达的影响 | 第62-74页 |
1 材料与方法 | 第63-65页 |
1.1 实验动物及菌种 | 第63页 |
1.2 主要试剂 | 第63页 |
1.3 主要仪器 | 第63页 |
1.4 体内攻毒实验方法 | 第63-64页 |
1.5 原代细胞实验方法 | 第64页 |
1.6 总RNA提取 | 第64-65页 |
1.7 cDNA合成及实时荧光定量PCR | 第65页 |
1.8 统计分析 | 第65页 |
2 结果 | 第65-71页 |
2.1 急性冷胁迫下中华鳖肠道S5段il6表达变化 | 第65-66页 |
2.2 急性冷胁迫下中华鳖肠道S8段il6表达变化 | 第66-68页 |
2.3 急性冷胁迫下中华鳖肠道脾脏il6表达变化 | 第68-69页 |
2.4 免疫刺激剂刺激中华鳖脾脏原代细胞后il6的应答变化 | 第69-71页 |
3 讨论 | 第71-74页 |
3.1 急性冷胁迫下中华鳖il6对细菌的应答变化 | 第71-72页 |
3.2 中华鳖脾脏细胞中il6表达的调控 | 第72-74页 |
第五章 总结与展望 | 第74-76页 |
参考文献 | 第76-86页 |
附录 | 第86-88页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第88-89页 |
致谢 | 第89-90页 |
个人简况及联系方式 | 第90-91页 |