| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 引言 | 第17-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-25页 |
| 1.1 脑缺血再灌注致损伤的机理 | 第18-20页 |
| 1.1.1 钙离子超载 | 第18-19页 |
| 1.1.2 兴奋性氨基酸毒性反应 | 第19页 |
| 1.1.3 自由基 | 第19页 |
| 1.1.4 炎症反应 | 第19页 |
| 1.1.5 血脑屏障损坏 | 第19-20页 |
| 1.1.6 细胞凋亡 | 第20页 |
| 1.2 补阳还五汤防治脑缺血再灌注损伤的机制 | 第20-23页 |
| 1.2.1 改善血液流变学 | 第21页 |
| 1.2.2 抑制兴奋性氨基酸毒性反应 | 第21页 |
| 1.2.3 抗氧化 | 第21-22页 |
| 1.2.4 抑制炎症反应 | 第22页 |
| 1.2.5 修复神经系统 | 第22-23页 |
| 1.3 本课题的选题依据与创新性 | 第23-25页 |
| 1.3.1 选题依据 | 第23-24页 |
| 1.3.2 创新性 | 第24-25页 |
| 第二章 原代rBMECs的分离、培养和鉴定及氧糖剥夺再灌注模型的建立 | 第25-40页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.1 仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.2 试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第26页 |
| 2.2 方法与结果 | 第26-38页 |
| 2.2.1 原代rBMECs的分离培养 | 第26-30页 |
| 2.2.2 CCK-8法测定rBMECs生长曲线 | 第30-31页 |
| 2.2.3 原代rBMECs的鉴定 | 第31-34页 |
| 2.2.4 氧糖剥夺再灌注模型的建立 | 第34-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-39页 |
| 2.3.1 原代rBMECs的分离培养 | 第38页 |
| 2.3.2 原代rBMECs氧糖剥夺再灌注模型的建立 | 第38-39页 |
| 2.4 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 补阳还五汤对rBMECs OGD/R损伤后紧密连接蛋白表达的影响 | 第40-55页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第40-43页 |
| 3.1.1 仪器 | 第40-41页 |
| 3.1.2 试剂 | 第41-42页 |
| 3.1.3 药材 | 第42-43页 |
| 3.2 方法与结果 | 第43-53页 |
| 3.2.1 补阳还五汤安全浓度的确定 | 第43-45页 |
| 3.2.2 血脑屏障通透性检测 | 第45-46页 |
| 3.2.3 Western blot检测Occludin及ZO-1蛋白水平 | 第46-49页 |
| 3.2.4 荧光定量RT-PCR检测Occludin及ZO-1蛋白mRNA的表达水平 | 第49-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-54页 |
| 3.3.1 补阳还五汤对体外血脑屏障模型通透性的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.2 补阳还五汤对紧密连接蛋白表达的影响 | 第54页 |
| 3.4 小结 | 第54-55页 |
| 3.4.1 补阳还五汤对体外血脑屏障模型通透性的影响 | 第54页 |
| 3.4.2 对紧密连接蛋白Occludin、ZO-1表达的影响 | 第54-55页 |
| 第四章 补阳还五汤促进rBMECs OGD/R损伤后的细胞增殖 | 第55-65页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.1 仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.2 试剂 | 第56页 |
| 4.1.3 药材 | 第56页 |
| 4.2 方法与结果 | 第56-63页 |
| 4.2.1 CCK-8法测定细胞增殖 | 第56-57页 |
| 4.2.2 BrdU检测细胞增殖 | 第57-60页 |
| 4.2.3 流式细胞仪检测细胞周期 | 第60-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63页 |
| 4.4 小结 | 第63-65页 |
| 结语 | 第65-68页 |
| 1 结论 | 第65-66页 |
| 2 展望与不足 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 附件1:统评学处理合格证明 | 第77页 |
