| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 缩略术语表 | 第16-17页 |
| 前言 | 第17-23页 |
| 体内实验(IN VIVO) | 第23-72页 |
| 实验材料 | 第23-30页 |
| 1. 实验动物 | 第23页 |
| 2. 药品与试剂 | 第23-25页 |
| 2.1 造模用药品及试剂 | 第23页 |
| 2.2 样品处理使用试剂 | 第23页 |
| 2.3 试剂盒 | 第23-24页 |
| 2.4 Western Blot相关试剂 | 第24页 |
| 2.5 抗体 | 第24-25页 |
| 2.6 q-PCR相关试剂 | 第25页 |
| 2.7 引物序列 | 第25页 |
| 3. 主要仪器 | 第25-26页 |
| 4. 常用溶液的配制 | 第26-30页 |
| 4.1 动物造模用液 | 第26页 |
| 4.2 动物实验用液 | 第26-27页 |
| 4.3 H.E染色用液 | 第27页 |
| 4.4 免疫组化染色用液 | 第27-28页 |
| 4.5 Western Blot实验用液 | 第28-29页 |
| 4.6 RNA提取用液 | 第29-30页 |
| 实验方法 | 第30-41页 |
| 1. DSS诱导的小鼠实验性结肠炎模型的建立 | 第30-31页 |
| 2. 动物整体情况记录 | 第31页 |
| 3. 动物组织样本的收集和处理 | 第31-33页 |
| 4. 血清中FITC-dextran荧光强度检测[71] | 第33页 |
| 5. 血清中炎症标志物lipocalin-2[105]的检测 | 第33页 |
| 6. 结肠组织MPO(髓过氧化物酶)活性检测 | 第33-34页 |
| 7. 结肠组织标本的H.E染色和免疫组织化学染色 | 第34-36页 |
| 7.1 常规HE染色步骤 | 第35页 |
| 7.2 免疫组化染色染色步骤 | 第35-36页 |
| 8. ELISA检测 | 第36页 |
| 9. Western Blot检测 | 第36-38页 |
| 10. q-PCR检测 | 第38-40页 |
| 11. 统计学方法 | 第40-41页 |
| 实验结果 | 第41-72页 |
| 1. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠的药效学研究 | 第41-49页 |
| 1.1 CAI对动物体重的影响 | 第41-43页 |
| 1.2 CAI对动物结肠组织大体评分的影响 | 第43-45页 |
| 1.3 CAI对动物疾病活动指数的影响 | 第45页 |
| 1.4 CAI对动物结肠长度和重量的影响 | 第45-47页 |
| 1.5 CAI对动物脾脏重量的影响 | 第47-49页 |
| 2. CAI对DSS诱导急性结肠炎小鼠血清和肠道组织中炎症相关检测指标的影响 | 第49-52页 |
| 2.1 CAI对急性结肠炎小鼠血清中Lipocalin-2水平的影响 | 第49页 |
| 2.2 CAI对急性结肠炎小鼠结肠组织中髓过氧化物酶(MPO)活性的影响 | 第49-50页 |
| 2.3 CAI对急性结肠炎小鼠血清中FITC水平的影响 | 第50-52页 |
| 3. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠肠道病理改变的组织学影响 | 第52-54页 |
| 4. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠结肠组织中相关细胞因子水平的影响 | 第54-62页 |
| 4.1 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IL-1β表达水平的影响 | 第54-55页 |
| 4.2 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IL-18表达水平的影响 | 第55-56页 |
| 4.3 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中TNF-α表达水平的影响 | 第56-57页 |
| 4.4 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IL-6表达水平的影响 | 第57-58页 |
| 4.5 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IL-17表达水平的影响 | 第58-59页 |
| 4.6 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IL-10表达水平的影响 | 第59-60页 |
| 4.7 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中TGF-β表达水平的影响 | 第60-62页 |
| 5. CAI对DSS诱导急性结肠炎小鼠结肠组织中IL-1β和IL-18蛋白表达水平的影响 | 第62-64页 |
| 6. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠核转录因子NF-κB的调节作用 | 第64-67页 |
| 6.1 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中IκBα活化的影响 | 第64-65页 |
| 6.2 CAI对结肠炎小鼠结肠组织中NF-κB表达和活化的影响 | 第65-67页 |
| 7. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠结肠组织中NLRP3炎症体的抑制作用 | 第67-72页 |
| 7.1 CAI对小鼠结肠组织中NLRP3炎症体mRNA水平的影响 | 第67-69页 |
| 7.2 CAI对小鼠结肠组织中NLRP3炎症体蛋白表达水平的影响 | 第69-72页 |
| 体外实验(IN VITRO) | 第72-88页 |
| 实验材料 | 第72-75页 |
| 1. 细胞系 | 第72页 |
| 2. 药品与试剂 | 第72-73页 |
| 2.1 细胞培养材料及药品试剂 | 第72页 |
| 2.2 样品处理使用试剂 | 第72页 |
| 2.3 试剂盒 | 第72页 |
| 2.4 Western Blot相关试剂 | 第72-73页 |
| 2.5 抗体 | 第73页 |
| 3. 主要仪器 | 第73页 |
| 4. 常用溶液的配制 | 第73-75页 |
| 4.1 细胞培养用液 | 第73页 |
| 4.2 细胞实验用液 | 第73-74页 |
| 4.3 Western Blot实验用液 | 第74-75页 |
| 实验方法 | 第75-79页 |
| 1. 选用THP-1细胞的理论依据 | 第75页 |
| 2. THP-1细胞的复苏、培养、传代及冻存 | 第75-76页 |
| 2.1 细胞的复苏 | 第75页 |
| 2.2 细胞的培养及传代 | 第75页 |
| 2.3 细胞的冻存 | 第75-76页 |
| 3. 细胞的诱导分化 | 第76页 |
| 4. CCK-8法测细胞增殖 | 第76-77页 |
| 5. SRB法检测细胞增殖 | 第77页 |
| 6. ELISA检测炎症相关细胞因子在细胞上清中的表达 | 第77页 |
| 7. Western blot检测信号通路相关蛋白在细胞中的表达水平 | 第77-78页 |
| 8. 统计学方法 | 第78-79页 |
| 实验结果 | 第79-88页 |
| 1. CAI对THP-1细胞的毒性作用 | 第79-81页 |
| 2. CAI对LPS刺激的经PMA诱导的THP-1细胞中相关细胞因子水平的影响 | 第81-85页 |
| 2.1 CAI对细胞上清中IL-1β表达水平的影响 | 第81-82页 |
| 2.2 CAI对细胞上清中IL-18表达水平的影响 | 第82-83页 |
| 2.3 CAI对细胞上清中TNF-a表达水平的影响 | 第83-85页 |
| 3. CAI对LPS刺激的经PMA诱导的THP-1细胞中IκBα的活化有抑制作用 | 第85-86页 |
| 4. CAI对LPS刺激的经PMA诱导的THP-1细胞中NLRP3炎症体的抑制作用 | 第86-88页 |
| 讨论 | 第88-97页 |
| 1. 炎性肠病的现状、治疗方法和相关动物模型 | 第88-89页 |
| 2. CAI对DSS诱导的急性结肠炎小鼠的治疗作用 | 第89-90页 |
| 2.1 CAI对小鼠生存期间疾病的缓解作用及小鼠结肠炎相关组织的作用 | 第89页 |
| 2.2 CAI对急性结肠炎动物体内炎症程度的影响 | 第89-90页 |
| 2.3 CAI对急性结肠炎动物肠道完整性的保护作用 | 第90页 |
| 3. CAI对结肠炎动物体内核转录因子NF-κB及其相关信号通路的影响 | 第90-91页 |
| 4. CAI对急性结肠炎模型动物体内NLRP3炎症体的作用 | 第91-92页 |
| 5. CAI对急性结肠炎模型动物体内IBD相关各细胞因子的作用 | 第92-95页 |
| 6. CAI在细胞水平对NF-κB信号通路和NLRP3炎症体以及相关细胞因子的作用 | 第95-97页 |
| 结论 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-111页 |
| 综述 | 第111-135页 |
| 参考文献 | 第119-135页 |
| 致谢 | 第135-136页 |
