| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-24页 |
| 1.1 骨组织再生研究现状及骨缺损治疗药物 | 第14-18页 |
| 1.1.1 临床使用的骨组织再生方法及其局限性 | 第14-16页 |
| 1.1.2 二膦酸盐类制剂 | 第16页 |
| 1.1.3 激素类药物 | 第16-17页 |
| 1.1.4 骨形态发生蛋白和其他生长因子 | 第17-18页 |
| 1.2 炎症微环境同骨损伤修复的关系 | 第18-20页 |
| 1.2.1 抗感染治疗对再生效果的影响 | 第18-19页 |
| 1.2.2 非感染性炎症与骨愈合 | 第19-20页 |
| 1.3 壳聚糖药物载体的应用与本研究思路 | 第20-24页 |
| 1.3.1 壳聚糖作为基因载体的应用 | 第20-22页 |
| 1.3.2 壳聚糖作为支架材料在骨组织再生中的应用 | 第22-23页 |
| 1.3.3 研究思路 | 第23-24页 |
| 第二章 壳聚糖-低分子量聚乙烯亚胺/h BMP-2 体内外促骨再生作用的研究 | 第24-47页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.2.1 CS-PEI共聚物及CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 动态光散射检测CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子的粒径及电势 | 第27页 |
| 2.2.3 DNA琼脂糖凝胶阻滞电泳实验 | 第27页 |
| 2.2.4 MTT法检测CS-PEI共聚物对MC3T3-E1及 293T细胞增殖的影响 | 第27页 |
| 2.2.5 细胞凋亡检测 | 第27-28页 |
| 2.2.6 细胞周期检测 | 第28页 |
| 2.2.7 细胞转染实验 | 第28页 |
| 2.2.8 CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子体外促MC3T3-E1细胞成骨分化作用的研究 | 第28-31页 |
| 2.2.9 茜素红染色 | 第31页 |
| 2.2.10 CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子体内修复大鼠颅骨缺损的研究 | 第31-32页 |
| 2.2.11 体内毒性研究 | 第32页 |
| 2.2.12 统计学分析 | 第32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-43页 |
| 2.3.1 CS-PEI共聚物及CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子的表征 | 第32-37页 |
| 2.3.2 CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子体外促MC3T3-E1细胞成骨分化的作用 | 第37-39页 |
| 2.3.3 CS-PEI/h BMP-2 纳米粒子体内修复大鼠颅骨缺损 | 第39-42页 |
| 2.3.4 体内毒性 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第三章 雷帕霉素增强CS-PEI/h BMP-2 体内外促骨再生作用的研究 | 第47-56页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第47页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第47页 |
| 3.2 实验方法 | 第47-48页 |
| 3.2.1 雷帕霉素增强CS-PEI/h BMP-2 体外促MC3T3-E1细胞成骨分化作用的研究 | 第47-48页 |
| 3.2.2 雷帕霉素协同CS-PEI/h BMP-2 体内修复大鼠颅骨缺损的研究 | 第48页 |
| 3.2.3 统计学分析 | 第48页 |
| 3.3 实验结果 | 第48-54页 |
| 3.3.1 Real time-PCR检测成骨相关因子表达情况 | 第48-51页 |
| 3.3.2 茜素红染色结果 | 第51-52页 |
| 3.3.3 雷帕霉素协同CS-PEI/h BMP-2 体内修复大鼠颅骨缺损 | 第52-54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-55页 |
| 3.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 载EPO壳聚糖温敏水凝胶在兔上颌窦提升术中的应用研究 | 第56-68页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第56-57页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第56-57页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.2 实验方法 | 第57-59页 |
| 4.2.1 CS/GP/GA温敏性水凝胶的制备及表征 | 第57-58页 |
| 4.2.2 骨髓基质细胞的分离与培养 | 第58页 |
| 4.2.3 EPO-CS/GP/GA gel对骨髓基质细胞增殖作用影响 | 第58页 |
| 4.2.4 检测EPO-CS/GP/GA对骨髓基质细胞成骨分化的影响 | 第58页 |
| 4.2.5 建立新西兰兔上颌窦提升术模型 | 第58-59页 |
| 4.2.6 CBCT检测新生骨量 | 第59页 |
| 4.2.7 组织学染色检测新骨形成情况 | 第59页 |
| 4.2.8 统计学分析 | 第59页 |
| 4.3 实验结果 | 第59-65页 |
| 4.3.1 不同p H值对凝胶形成时间的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.2 EPO的缓释速率 | 第60页 |
| 4.3.3 载EPO壳聚糖温敏水凝胶的生物学功能 | 第60-62页 |
| 4.3.4 上颌窦提升效果评价 | 第62-65页 |
| 4.4 讨论 | 第65-66页 |
| 4.5 本章小结 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-82页 |
| 作者简介及科研成果 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
