| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-19页 |
| ·桉树快繁 | 第11页 |
| ·桉树转基因研究和 4CL 转基因研究 | 第11-14页 |
| ·桉树转基因研究 | 第11-12页 |
| ·4CL 转基因研究 | 第12-14页 |
| ·铜锌超氧化物歧化酶基因克隆与抗逆性研究 | 第14-18页 |
| ·超氧化物歧化酶的作用机制 | 第14页 |
| ·Cu/Zn SOD 基因的克隆 | 第14-16页 |
| ·Cu/Zn SOD 在植物抗逆基因工程中的研究 | 第16-18页 |
| ·本论文研究意义和课题来源 | 第18-19页 |
| 第2章 巨尾桉快繁体系建立 | 第19-29页 |
| ·材料 | 第19-22页 |
| ·试验方法 | 第22-24页 |
| ·茎段外植体的取材与灭菌 | 第22-23页 |
| ·最佳基本培养基筛选 | 第23页 |
| ·不定芽分化培养基优化 | 第23页 |
| ·生根培养基优化 | 第23页 |
| ·炼苗与移栽 | 第23-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-28页 |
| ·外植体的最佳灭菌条件 | 第24页 |
| ·不同基本培养基对茎段腋芽生长的影响 | 第24-25页 |
| ·不同生长调节剂对丛芽增值的影响 | 第25页 |
| ·不同因素对芽段生根的影响 | 第25-28页 |
| ·组培苗移栽 | 第28页 |
| ·结论与讨论 | 第28-29页 |
| 第3章 巨尾桉转基因直接分化体系的建立与反义4CL1基因的遗传转化 | 第29-41页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-33页 |
| ·植物表达载体转化根癌农杆菌 | 第30-31页 |
| ·巨尾桉转基因体系优化 | 第31-32页 |
| ·转基因植株 PCR 检测 | 第32-33页 |
| ·实验结果 | 第33-40页 |
| ·双元载体根癌农杆菌的筛选 | 第33-35页 |
| ·巨尾桉转基因体系建立 | 第35-38页 |
| ·反义 4CL1 转基因苗的获得 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-41页 |
| 第4章 巨尾桉Cu/Zn SOD1基因的克隆及生物信息学分析 | 第41-57页 |
| ·材料 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42-48页 |
| ·Trizol 法提取巨尾桉总 RNA | 第42-43页 |
| ·RT-PCR 克隆 Cu/Zn SOD1 基因 | 第43-47页 |
| ·巨尾桉 Cu/Zn SOD1 基因的序列分析 | 第47-48页 |
| ·实验结果分析 | 第48-56页 |
| ·巨尾桉总 RNA 提取 | 第48页 |
| ·巨尾桉 Cu/Zn SOD1 基因 cDNA 的获得 | 第48-50页 |
| ·巨尾桉 Cu/Zn SOD1 基因的生物信息学分析 | 第50-56页 |
| ·结论 | 第56-57页 |
| 第5章 Cu/Zn SOD1基因在大肠杆菌中表达、条件优化及活性检测 | 第57-67页 |
| ·材料 | 第57-58页 |
| ·实验方法 | 第58-61页 |
| ·原核表达载体 pET-Cu/Zn SOD1 的构建 | 第58-60页 |
| ·Cu/Zn SOD1 蛋白原核表达分析 | 第60页 |
| ·NBT 法检测 SOD 蛋白酶活 | 第60-61页 |
| ·结果 | 第61-65页 |
| ·表达载体 pET-Cu/Zn SOD1 的构建 | 第61-62页 |
| ·重组表达蛋白分析 | 第62-63页 |
| ·不同 IPTG 浓度诱导对重组蛋白表达的影响 | 第63页 |
| ·不同培养时间对重组蛋白表达的影响 | 第63-64页 |
| ·酶活检测 | 第64-65页 |
| ·讨论 | 第65-67页 |
| 第6章 结论与展望 | 第67-69页 |
| ·主要研究结论 | 第67页 |
| ·进一步的工作方向 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简历、在校期间发表的学术论文与研究成果 | 第75页 |
