摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-23页 |
符号说明 | 第23-24页 |
第1章 绪论 | 第24-48页 |
·车前研究进展 | 第24-34页 |
·植物形态特征 | 第24-25页 |
·主要化学成分 | 第25-31页 |
·苯乙醇苷类化合物 | 第25-26页 |
·多糖类化合物 | 第26-27页 |
·环烯醚萜类 | 第27-28页 |
·黄酮类 | 第28-29页 |
·甾体类及三萜类化合物 | 第29页 |
·氨基酸 | 第29-30页 |
·生物碱 | 第30-31页 |
·挥发油类化合物 | 第31页 |
·其它 | 第31页 |
·药理作用 | 第31-34页 |
·止咳祛痰平喘 | 第31-32页 |
·利尿及预防肾结石形成作用 | 第32页 |
·护肝利胆 | 第32页 |
·抗菌抗癌抗病毒 | 第32-33页 |
·抗发炎、止痛作用 | 第33页 |
·降压降脂降血糖作用 | 第33页 |
·抗氧化作用 | 第33-34页 |
·通便作用 | 第34页 |
·对免疫系统的影响 | 第34页 |
·明目作用 | 第34页 |
·对关节囊的作用 | 第34页 |
·其他 | 第34页 |
·多糖类提取分离研究进展 | 第34-39页 |
·多糖的提取 | 第35页 |
·多糖的分离纯化 | 第35-39页 |
·脱蛋白 | 第35-36页 |
·多糖的分离 | 第36-37页 |
·纯度鉴定 | 第37-38页 |
·分子量测定 | 第38-39页 |
·黄酮类提取分离研究进展 | 第39-43页 |
·黄酮提取方法 | 第39-41页 |
·有机溶剂提取法 | 第39-40页 |
·热水提取 | 第40页 |
·碱性稀醇或碱性水提取 | 第40页 |
·超滤法 | 第40页 |
·超声波提取法 | 第40页 |
·微波提取法 | 第40-41页 |
·超临界提取法 | 第41页 |
·高速逆流色谱技术提取法 | 第41页 |
·黄酮纯化方法 | 第41-43页 |
·液-液萃取法 | 第41页 |
·柱层析法 | 第41-42页 |
·薄层层析法 | 第42页 |
·树脂吸附法 | 第42-43页 |
·制备液相色谱法 | 第43页 |
·苯乙醇苷类提取分离研究进展 | 第43-44页 |
·苯乙醇苷类提取方法 | 第43页 |
·苯乙醇苷类分离纯化方法 | 第43-44页 |
·液-液萃取法 | 第43-44页 |
·柱层析或薄层层析法 | 第44页 |
·本研究的目的意义、主要研究内容和创新性 | 第44-48页 |
·目的意义 | 第44-45页 |
·主要研究内容 | 第45-46页 |
·本研究的创新性 | 第46-48页 |
第2章 车前子多糖的纯化和分子量测定 | 第48-59页 |
·引言 | 第48页 |
·实验部分 | 第48-52页 |
·实验材料 | 第48-49页 |
·实验设备 | 第49页 |
·实验方法 | 第49-52页 |
·脱蛋白方法比较 | 第49-51页 |
·凝胶层析纯化车前子多糖 | 第51页 |
·高效凝胶渗透色谱法鉴定 SPG纯度 | 第51页 |
·HPGPC法测定 SPG分子量 | 第51-52页 |
·结果与讨论 | 第52-58页 |
·脱蛋白方法比较 | 第52-54页 |
·蛋白质标准曲线 | 第52页 |
·葡萄糖标准曲线 | 第52页 |
·不同脱蛋白方法的结果比较 | 第52-54页 |
·凝胶柱纯化结果 | 第54页 |
·高效凝胶渗透色谱法纯度鉴定结果 | 第54页 |
·HPGPC法测定车前子多糖的分子量 | 第54-58页 |
·本章小结 | 第58-59页 |
第3章 车前子多糖含量测定的方法学研究 | 第59-69页 |
·引言 | 第59页 |
·实验部分 | 第59-62页 |
·实验材料 | 第59页 |
·实验设备 | 第59-60页 |
·实验方法 | 第60-62页 |
·苯酚-硫酸法、蒽酮-硫酸法波长扫描的比较 | 第60页 |
·苯酚-硫酸法最佳反应条件的确定 | 第60-61页 |
·标准曲线的绘制 | 第61页 |
·换算因子的测定 | 第61-62页 |
·样品中车前子多糖含量的测定 | 第62页 |
·结果与讨论 | 第62-68页 |
·苯酚-硫酸法、蒽酮-硫酸法波长扫描的比较 | 第63-64页 |
·苯酚-硫酸法最佳反应条件的确定 | 第64-66页 |
·苯酚浓度的确定 | 第64页 |
·苯酚用量的确定 | 第64页 |
·浓硫酸用量的确定 | 第64-65页 |
·反应温度的确定 | 第65页 |
·显色时间的确定 | 第65-66页 |
·木糖标准曲线 | 第66页 |
·换算因子f的测定 | 第66页 |
·重现性 | 第66-67页 |
·稳定性 | 第67页 |
·精密度 | 第67页 |
·加样回收率 | 第67-68页 |
·样品中车前子多糖含量测定 | 第68页 |
·本章小结 | 第68-69页 |
第4章 车前子精制多糖对小鼠免疫功能的影响 | 第69-76页 |
·引言 | 第69页 |
·实验部分 | 第69-72页 |
·实验材料 | 第69-70页 |
·实验动物 | 第69-70页 |
·原料与试剂 | 第70页 |
·实验设备 | 第70页 |
·实验方法 | 第70-72页 |
·车前子精制多糖的制备 | 第70-71页 |
·动物分组 | 第71页 |
·动物给药 | 第71页 |
·指标侧定 | 第71-72页 |
·统计学处理 | 第72页 |
·结果与讨论 | 第72-75页 |
·提取温度对实验结果的影响 | 第72页 |
·车前子精制多糖对免疫抑制小鼠淋巴细胞转化的影响 | 第72-73页 |
·车前子多糖对免疫抑制小鼠血清溶血素含量的影响 | 第73-74页 |
·车前子多糖对免疫抑制小鼠腹腔巨噬细胞吞噬活性的影响 | 第74页 |
·车前子多糖对免疫抑制小鼠体内脾淋巴细胞IL-2分泌功能的影响 | 第74-75页 |
·本章小结 | 第75-76页 |
第5章 车前子总黄酮的提取工艺优化 | 第76-90页 |
·引言 | 第76页 |
·实验部分 | 第76-78页 |
·实验材料 | 第76页 |
·实验设备 | 第76-77页 |
·实验方法 | 第77-78页 |
·溶剂提取法 | 第77-78页 |
·超临界CO_2提取 | 第78页 |
·结果与讨论 | 第78-88页 |
·溶剂提取法 | 第78-83页 |
·单因素实验 | 第78-81页 |
·正交实验结果 | 第81-83页 |
·精密度的测定 | 第83页 |
·重现性的测定 | 第83页 |
·超临界 CO_2提取 | 第83-88页 |
·单因素实验 | 第84-87页 |
·正交实验 | 第87-88页 |
·验证实验 | 第88页 |
·本章小结 | 第88-90页 |
第6章 车前子乙醇提取液的纯化及纯化液的液相色谱-质谱分析 | 第90-103页 |
·引言 | 第90-91页 |
·实验部分 | 第91-94页 |
·实验材料 | 第91页 |
·实验设备 | 第91页 |
·实验方法 | 第91-94页 |
·醇提液及各萃取部分的制备 | 第91-92页 |
·体外抗氧化活性的测定 | 第92-93页 |
·大孔树脂纯化 | 第93页 |
·LC-MS联用技术分析纯化液主要成分 | 第93-94页 |
·结果与讨论 | 第94-102页 |
·液液萃取溶剂的选择 | 第94-96页 |
·车前子总黄酮醇提物的体外抗氧化活性 | 第94-95页 |
·各萃取液的体外抗氧化能力比较 | 第95-96页 |
·大孔吸附树脂对车前子总黄酮的纯化 | 第96-98页 |
·树脂吸附率的测定 | 第97页 |
·树脂解吸率的测定 | 第97-98页 |
·吸附动力学曲线 | 第98页 |
·AB-8型树脂对正丁醇萃取液的纯化 | 第98页 |
·纯化液的LC-MS分析 | 第98-102页 |
·本章小结 | 第102-103页 |
第7章 车前子中黄酮单体的分离及结构鉴定 | 第103-126页 |
·引言 | 第103页 |
·实验部分 | 第103-106页 |
·实验材料 | 第103页 |
·实验设备 | 第103-104页 |
·实验方法 | 第104-106页 |
·车前子乙醇提取物的制备 | 第104页 |
·分离实验 | 第104页 |
·HPLC检识 | 第104-105页 |
·制备液相色谱条件 | 第105页 |
·UV谱图 | 第105-106页 |
·红外谱图 | 第106页 |
·ESI-MS | 第106页 |
·NMR | 第106页 |
·分子模型 | 第106页 |
·结果与讨论 | 第106-125页 |
·单体的分离纯化 | 第107-108页 |
·化合物I的鉴定 | 第108-117页 |
·理化性质 | 第108页 |
·紫外扫描结果 | 第108-112页 |
·红外谱图 | 第112页 |
·质谱图 | 第112-113页 |
·核磁共振谱图 | 第113-117页 |
·化合物II的结构鉴定 | 第117-122页 |
·理化性质 | 第117页 |
·紫外扫描结果 | 第117-118页 |
·红外谱图 | 第118页 |
·质谱图 | 第118-119页 |
·核磁共振谱图 | 第119-122页 |
·P1的组分分析 | 第122-125页 |
·组分1的结构推测 | 第122-124页 |
·组分2的结构推测 | 第124-125页 |
·本章小结 | 第125-126页 |
第8章 车前子中苯乙醇苷类的分离及结构鉴定 | 第126-139页 |
·引言 | 第126页 |
·实验部分 | 第126-128页 |
·实验材料 | 第126页 |
·实验设备 | 第126-127页 |
·实验方法 | 第127-128页 |
·车前子乙醇提取物的制备 | 第127页 |
·分离实验 | 第127页 |
·HPLC检识 | 第127页 |
·制备液相色谱条件 | 第127页 |
·UV谱图 | 第127页 |
·红外谱图 | 第127-128页 |
·ESI-MS | 第128页 |
·NMR | 第128页 |
·分子模型 | 第128页 |
·结果与讨论 | 第128-138页 |
·单体的分离纯化 | 第128-129页 |
·化合物III的鉴定 | 第129-134页 |
·理化性质 | 第129页 |
·紫外光谱 | 第129页 |
·红外谱图 | 第129-130页 |
·质谱图 | 第130页 |
·核磁共振谱图 | 第130-134页 |
·化合物IV的鉴定 | 第134-138页 |
·理化性质 | 第134页 |
·紫外谱图 | 第134页 |
·红外谱图 | 第134-135页 |
·质谱图 | 第135-136页 |
·核磁共振谱图 | 第136-138页 |
·本章小结 | 第138-139页 |
第9章 反相高效液相色谱法同时测定车前子中的毛蕊花苷和异毛蕊花苷 | 第139-147页 |
·引言 | 第139页 |
·实验部分 | 第139-141页 |
·实验材料 | 第139页 |
·实验设备 | 第139-140页 |
·实验方法 | 第140-141页 |
·色谱条件 | 第140页 |
·对照品溶液的配制 | 第140页 |
·样品前处理 | 第140页 |
·提取方法的选择 | 第140页 |
·样品溶液的制备 | 第140-141页 |
·结果与讨论 | 第141-146页 |
·定性分析标准图谱 | 第141页 |
·测定波长和流动相的选择 | 第141-142页 |
·样品提取方法的选择 | 第142页 |
·标准曲线的制定 | 第142-144页 |
·精密度 | 第144页 |
·重现性 | 第144页 |
·稳定性 | 第144-145页 |
·加样回收率 | 第145-146页 |
·样品测定 | 第146页 |
·本章小结 | 第146-147页 |
第10章 车前子苯乙醇苷类对树突状细胞的增殖影响 | 第147-153页 |
·引言 | 第147页 |
·实验部分 | 第147-149页 |
·实验材料 | 第147-148页 |
·实验动物 | 第147-148页 |
·实验试剂 | 第148页 |
·实验设备 | 第148页 |
·BM-DCs前体细胞的分离纯化 | 第148-149页 |
·毛蕊花苷和异毛蕊花苷对BM-DCs增殖的影响 | 第149页 |
·统计方法 | 第149页 |
·结果与讨论 | 第149-152页 |
·树突状细胞培养过程中镜下观察 | 第149页 |
·毛蕊花苷和异毛蕊花苷对BM-DCs增殖的影响 | 第149-151页 |
·毛蕊花苷和异毛蕊花苷与细胞因子协同对BM-DCs增殖的影响 | 第151-152页 |
·本章小结 | 第152-153页 |
第11章 车前子黄酮和苯乙醇苷的体外抗氧化活性研究 | 第153-161页 |
·引言 | 第153-154页 |
·实验部分 | 第154-155页 |
·实验材料 | 第154页 |
·实验设备 | 第154页 |
·实验方法 | 第154-155页 |
·超氧阴离子自由基清除实验 | 第154页 |
·轻自由基清除实验 | 第154-155页 |
·卵黄脂蛋白脂质过氧化抑制实验 | 第155页 |
·结果与讨论 | 第155-159页 |
·超氧阴离子自由基清除结果 | 第155-156页 |
·羟自由基清除结果 | 第156-157页 |
·卵黄脂蛋白脂质过氧化抑制结果 | 第157-158页 |
·抗氧化活性与化学结构的关系讨论 | 第158-159页 |
·本章小结 | 第159-161页 |
第12章 结论 | 第161-163页 |
致谢 | 第163-164页 |
参考文献 | 第164-177页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第177页 |