| 英文缩略词表 | 第1-11页 |
| 中文摘要 | 第11-16页 |
| 英文摘要 | 第16-21页 |
| 实验研究 | 第21-111页 |
| 实验一：芍芪多苷的制备工艺和质量研究 | 第21-56页 |
| 1.前言 | 第21-23页 |
| 2.实验材料 | 第23-25页 |
| ·药材与试剂 | 第23-24页 |
| ·仪器与设备 | 第24-25页 |
| ·动物 | 第25页 |
| 3.实验方法 | 第25-35页 |
| ·白芍和黄芪最佳剂量配比研究 | 第25-27页 |
| ·均匀设计分组 | 第26页 |
| ·动物造模与给药方法 | 第26页 |
| ·数据统计与分析 | 第26-27页 |
| ·药材配比验证试验 | 第27页 |
| ·SQDG制备工艺研究 | 第27-30页 |
| ·SQDG提取工艺研究 | 第27-29页 |
| ·SQDG大孔树脂纯化工艺的研究 | 第29-30页 |
| ·SQDG质量研究 | 第30-35页 |
| ·TLC鉴别研究 | 第30-31页 |
| ·含量测定 | 第31-35页 |
| 4.实验结果 | 第35-48页 |
| ·白芍和黄芪的最佳剂量配比研究 | 第35-36页 |
| ·白芍和黄芪的最佳剂量配比 | 第35页 |
| ·最佳剂量配比验证试验 | 第35-36页 |
| ·SQDG的制备工艺研究 | 第36-41页 |
| ·SQDG提取工艺优选 | 第36-38页 |
| ·SQDG大孔树脂纯化工艺的研究 | 第38-41页 |
| ·SQDG的质量研究 | 第41-48页 |
| ·TLC鉴别研究 | 第41-42页 |
| ·含量测定 | 第42-48页 |
| 5.讨论 | 第48-51页 |
| ·白芍和黄芪抗急性肝损伤的最佳配比为4：1 | 第48-49页 |
| ·大孔吸附树脂纯化新技术的应用是SQDG制备的关键 | 第49-50页 |
| ·科学的质量控制体系的建立是开发研究SQDG的保证 | 第50-51页 |
| 6.小结 | 第51-52页 |
| 7.参考文献 | 第52-56页 |
| 实验二 芍芪多苷对大鼠化学性肝纤维化的作用及其促进胶原代谢的分子机制 | 第56-111页 |
| 1.前言 | 第56-58页 |
| 2.实验材料 | 第58-63页 |
| ·动物与细胞株 | 第58页 |
| ·药物与试剂 | 第58-61页 |
| ·仪器与设备 | 第61-63页 |
| 3.实验方法 | 第63-71页 |
| ·SQDG对大鼠化学性HF的治疗作用 | 第63-67页 |
| ·大鼠化学性HF模型诱导 | 第63页 |
| ·动物分组、给药方案与标本收集处理 | 第63页 |
| ·ALT、AST活性及A／G的测定 | 第63页 |
| ·血清HA含量的测定 | 第63-64页 |
| ·血清PCⅢ含量的测定 | 第64页 |
| ·血清C-Ⅰ含量的测定 | 第64-65页 |
| ·肝组织Hyp含量测定 | 第65页 |
| ·血清TGF-β1水平的测定 | 第65-66页 |
| ·病理组织学观察及评分标准 | 第66-67页 |
| ·肝脏病理免疫组织化学染色检测 | 第67页 |
| ·SQDG对HSC-T6细胞胶原代谢的影响 | 第67-68页 |
| ·SQDG对HSC-T6细胞产生胶原的影响 | 第67-68页 |
| ·SQDG对HSC-T6 cells产生MMP-13、TIMP-1的影响 | 第68页 |
| ·SQDG对TGF-β1诱导的HSC-T6细胞Gαi2、Gαs蛋白、胶原降解相关酶及胶原表达的调控 | 第68-71页 |
| ·细胞样品制备 | 第68页 |
| ·蛋白提取 | 第68-69页 |
| ·Western-blot法检测 | 第69-71页 |
| ·统计处理 | 第71页 |
| 4.实验结果 | 第71-91页 |
| ·SQDG对大鼠化学性HF的治疗作用 | 第71-86页 |
| ·对HF大鼠肝、脾指数的影响 | 第71-72页 |
| ·对HF大鼠血清ALT、AST、A／G的影响 | 第72-73页 |
| ·对HF大鼠血清HA、PCⅢ和C-Ⅰ水平的影响 | 第73-74页 |
| ·对HF大鼠肝匀浆Hyp含量的影响 | 第74-75页 |
| ·对HF大鼠血清TGF-β1水平的影响 | 第75页 |
| ·对HF大鼠肝肝脏病理组织学的影响 | 第75-77页 |
| ·大鼠肝脏TGF-β1、MMP-13、TIMP-1及C-Ⅰ的免疫组化 | 第77-86页 |
| ·SQDG对HSC-T6细胞胶原代谢的影响 | 第86-88页 |
| ·SQDG对HSC-T6细胞胶原合成的影响 | 第86页 |
| ·SQDG对TGF-β1刺激的HSC-T6细胞产生MMP-13、TIMP-1的影响 | 第86-88页 |
| ·SQDG对TGF-β1诱导的HSC-T6细胞Gi2、Gs、MMP-13、TIMP-1、C-Ⅰ表达水平变化的影响 | 第88-91页 |
| 5.讨论 | 第91-101页 |
| ·SQDG对CCl4诱导的大鼠HF具有保护作用 | 第92-96页 |
| ·降低化学性HF大鼠体内TGF-β1水平是SQDG抗HF的主要特点之一 | 第96-97页 |
| ·影响胶原降解酶及其抑制剂的合成是SQDG抗HF的重要机制之一 | 第97-99页 |
| ·SQDG可能通过调节HSC的Gαi2和Gαs的表达而影响胶原降解酶水平，发挥降解胶原的作用 | 第99-101页 |
| 6.小结 | 第101-102页 |
| 7.课题总结 | 第102-103页 |
| 8.参考文献 | 第103-111页 |
| 附录 | 第111-114页 |
| 致谢 | 第114-116页 |
| 综述：肝纤维化发生机制及治疗的研究进展 | 第116-136页 |
