摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-7页 |
1 引言 | 第7-18页 |
1.1 研究背景 | 第7-16页 |
1.1.1 水稻纹枯病的发生情况 | 第7页 |
1.1.2 水稻纹枯病病原菌的特点 | 第7-10页 |
1.1.3 立枯丝核菌定量研究的研究进展 | 第10-13页 |
1.1.4 实时荧光PCR的基本原理与方法比较 | 第13-16页 |
1.2 研究目的和意义 | 第16-17页 |
1.3 研究方案 | 第17-18页 |
2 水稻纹枯病病原菌分离物的获得与鉴定 | 第18-25页 |
2.1 材料与方法 | 第18-21页 |
2.1.1 供试材料的采集 | 第18页 |
2.1.2 病原分离物的分离纯化 | 第18页 |
2.1.3 病原分离物及所属融合群的鉴定 | 第18页 |
2.1.4 DNA操作与序列分析 | 第18-21页 |
2.2 结果与分析 | 第21-24页 |
2.2.1 病原分离物的分离纯化 | 第21页 |
2.2.2 玻片对峙培养结果 | 第21-22页 |
2.2.3 ITS区的克隆及序列分析结果 | 第22-24页 |
2.3 讨论 | 第24-25页 |
2.3.1 水稻纹枯病原菌及所属融合群的验证 | 第24页 |
2.3.2 所获分离物的序列分析 | 第24-25页 |
3 荧光PCR反应引物及探针的设计与验证 | 第25-34页 |
3.1 材料和方法 | 第25-27页 |
3.1.1 探针设计区段的确定 | 第25页 |
3.1.2 引物与探针的设计 | 第25-26页 |
3.1.3 将设计的探针进行BLAST | 第26页 |
3.1.4 以所设计的引物和探针进行荧光PCR反应进行保守性验证 | 第26-27页 |
3.1.5 特异性验证 | 第27页 |
3.2 结果与分析 | 第27-33页 |
3.2.1 引物与探针的序列 | 第27-28页 |
3.2.2 探针BLAST的结果 | 第28页 |
3.2.3 保守性检验结果 | 第28-32页 |
3.2.4 荧光PCR反应的特异性验证结果 | 第32-33页 |
3.3 讨论 | 第33-34页 |
4 Real-time PCR技术用于土壤中菌丝添加标准曲线的制作 | 第34-44页 |
4.1 材料与方法 | 第34-37页 |
4.1.1 标准品的制备与拷贝数的计算 | 第34页 |
4.1.2 土壤样品的处理 | 第34-35页 |
4.1.3 土壤DNA的提取 | 第35-36页 |
4.1.4 土壤样品含水率的测定 | 第36-37页 |
4.1.5 土壤DNA的定量扩增 | 第37页 |
4.2 结果与分析 | 第37-43页 |
4.2.1 标准品的制备与拷贝数的计算结果 | 第37-38页 |
4.2.2 冻融法提取土壤DNA的结果 | 第38-39页 |
4.2.3 小球破碎法进行土壤DNA提取结果 | 第39页 |
4.2.4 土壤含水量的测定结果 | 第39页 |
4.2.5 土壤DNA的定量扩增结果 | 第39-43页 |
4.3 讨论 | 第43-44页 |
5 土壤中水稻纹枯病原菌群体动态变化的监测 | 第44-49页 |
5.1 材料与方法 | 第44页 |
5.1.1 土壤样品采集的时间、地点、保存 | 第44页 |
5.1.2 标准品的制备与拷贝数的计算 | 第44页 |
5.1.3 土壤DNA的提取 | 第44页 |
5.1.4 土壤含水量的测定 | 第44页 |
5.1.5 土壤DNA的定量扩增 | 第44页 |
5.2 结果与分析 | 第44-47页 |
5.2.1 标准品的制备与拷贝数的计算 | 第44-45页 |
5.2.2 土壤DNA的提取结果 | 第45页 |
5.2.3 土壤含水量的测定结果 | 第45页 |
5.2.4 土壤DNA的定量扩增结果 | 第45-47页 |
5.3 讨论 | 第47-49页 |
6 综合讨论与结论 | 第49-53页 |
6.1 讨论 | 第49-51页 |
6.2 结论 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-57页 |
个人简介 | 第57-58页 |
导师简介 | 第58-59页 |
获得成果目录清单 | 第59-60页 |
致谢 | 第60页 |