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生物催化法合成和拆分手性丙二醇的研究

第一章 前言第1-20页
 1.1 研究背景第8-15页
  1.1.1 概述第8-9页
  1.1.2 手性分子的概念第9页
  1.1.3 生物催化手性合成的产生第9-10页
  1.1.4 开发手性药物的途径第10-11页
  1.1.5 手性化合物的生物方法合成第11-14页
  1.1.6 生物催化的研究第14-15页
 1.2 手性1,2-丙二醇的应用及研究进展第15-19页
  1.2.1 用酵母生产手性1,2-丙二醇第15-17页
  1.2.2 细菌拆分外消旋1,2-丙二醇第17-18页
  1.2.3 代谢工程菌生产手性1,2-丙二醇第18-19页
 1.3 本文所要完成的内容第19-20页
第二章 分析方法第20-26页
 2.1 产物的检测和分离纯化第20页
 2.2 手性化合物的对映体纯度测定第20-22页
  2.2.1 旋光度测定法第20-21页
  2.2.2 影响旋光度的因素第21-22页
 2.3 气相色谱检测方法第22-24页
  2.3.1 气相色谱仪第22页
  2.3.2 气相色谱分析方法第22-23页
   2.3.2.1 定性分析方法第22页
   2.3.2.2 定量分析方法第22-23页
  2.3.3 乙醇、丙酮醇和丙二醇的气相色谱分析第23-24页
 2.4 化学法测定丙酮醇第24-26页
第三章 选择性降解手性1,2-丙二醇菌株的筛选第26-36页
 3.1 材料和方法第26-27页
  3.1.1 样品采集第26页
  3.1.2 培养基第26页
  3.1.3 试剂第26页
  3.1.4 主要仪器第26-27页
 3.2 实验内容第27-29页
  3.2.1 菌种初筛第27-28页
  3.2.2 菌种的复筛第28页
  3.2.3 2L发酵罐进行大规模拆分第28-29页
  3.2.4 检测方法第29页
 3.3 试验结果与讨论第29-35页
  3.3.1 生长周期的测定第29页
  3.3.2 复筛结果第29-32页
  3.3.3 试探性改变培养基来增加菌体浓度第32-33页
  3.3.4 用静息细胞拆分第33页
  3.4.5 不同底物浓度下的拆分第33-34页
  3.4.6 2L发酵罐进行大规模拆分第34-35页
 3.5 本章小结第35-36页
第四章 酵母还原法不对称合成R-1,2-丙二醇第36-47页
 4.1 材料和方法第36-37页
  4.1.1 菌种来源第36页
  4.1.2 主要仪器第36-37页
  4.1.3 主要试剂第37页
 4.2 试验方法第37-38页
  4.2.1 共底物的选择第37页
  4.2.2 共底物浓度对底物转化的影响第37页
  4.2.3 pH值对底物转化的影响第37页
  4.2.4 底物量对转化率的影响第37-38页
  4.2.5 初步工艺条件下乙醇和甘油作为共底物的比较第38页
  4.2.6 大规模制备(R)-1,2-丙二醇第38页
 4.3 结果和讨论第38-43页
  4.3.1 溴丙酮的化学合成方法第38页
  4.3.2 羟丙酮的合成第38页
  4.3.3 共底物的选择第38-40页
  4.3.4 共底物浓度对底物转化的影响第40页
  4.3.5 pH对转化结果的影响第40-41页
  4.3.6 底物的量对转化的影响第41-42页
  4.3.7 酵母量对底物转化的影响第42页
  4.3.8 最优条件下乙醇和甘油作为共底物的比较第42-43页
 4.4 实验试小试生产第43-45页
 4.5 产物的分离与纯化第45-46页
 4.6 本章小结第46-47页
第五章 用面包酵母拆分外消旋体1,2-丙二醇第47-54页
 5.1 材料和方法第47页
  5.1.1 菌种来源第47页
  5.1.2 仪器和试剂第47页
 5.2 试验方法第47-48页
  5.2.1 拆分时间曲线的测定第47页
  5.2.2 不同转速下拆分曲线的测定第47-48页
  5.2.3 不同酵母量下优化曲线的测定第48页
  5.2.4 不同底物浓度下拆分曲线的测定第48页
  5.2.5 不同pH值下拆分曲线的测定第48页
 5.3 分析方法第48-49页
 5.4 结果分析第49-53页
  5.4.1 拆分时间曲线第49页
  5.4.2 不同转速下拆分曲线第49-50页
  5.4.3 不同酵母量下拆分曲线第50-51页
  5.4.4 不同底物浓度下拆分曲线第51页
  5.4.6 不同pH值下拆分曲线第51-52页
  5.4.7 用气相色谱测定拆分结果第52-53页
 5.5 本章小结第53-54页
结论第54-56页
参考文献第56-59页
致谢第59页

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