| 缩写表 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 1． 前言 | 第9-22页 |
| 1．1 ABA与气孔运动 | 第9-10页 |
| 1．2 植物细胞中H_2O_2的产生及作用机制 | 第10-15页 |
| 1．2．1 H_2O_2的产生和清除机制 | 第10-11页 |
| 1．2．2 H_2O_2的生理功能 | 第11-13页 |
| 1．2．3 H_2O_2与气孔运动 | 第13-15页 |
| 1．3 H_2O_2在ABA诱导气孔运动过程中的信号转导的研究 | 第15-17页 |
| 1．4 H_2O_2产生的亚细胞定位 | 第17-20页 |
| 1．4．1 测定植物体内H_2O_2产生的方法 | 第17-19页 |
| 1．4．1．1 激光共聚焦显微镜技术（LSCM) | 第17页 |
| 1．4．1．2 淀粉－碘化钾技术 | 第17-18页 |
| 1．4．1．3 DAB免疫组织化学技术 | 第18页 |
| 1．4．1．4 Ce-H_2O_2电子染色技术 | 第18-19页 |
| 1．4．2 H2O2产生的亚细胞定位 | 第19-20页 |
| 1．5 选题意义与依据 | 第20-22页 |
| 2． 材料与方法 | 第22-27页 |
| 2．1 植物材料 | 第22页 |
| 2．2 实验溶液 | 第22页 |
| 2．3 透射电镜（TEM）检测技术 | 第22-25页 |
| 2．4 激光共聚焦（LSCM）检测技术 | 第25-26页 |
| 2．5 化学试剂 | 第26-27页 |
| 3． 结果与分析 | 第27-43页 |
| 3．1 保卫细胞内H_2O_2产生的TEM检测 | 第27-39页 |
| 3．1．1 自然状态下保卫细胞和叶肉细胞内Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第27-28页 |
| 3．1．2 H_2O_2处理叶片10min后保卫细胞内Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第28-29页 |
| 3．1．3 ABA处理叶片10min后保卫细胞Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第29-30页 |
| 3．1．4 ABA处理叶片15min后保卫细胞Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第30-31页 |
| 3．1．5 ABA处理叶片20min后保卫细胞Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第31页 |
| 3．1．6 ABA处理30min后保卫细胞和叶肉细胞内Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第31-32页 |
| 3．1．7 ABA处理叶片60min后保卫细胞和叶肉细胞内Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第32-33页 |
| 3．1．8 ABA处理叶片90min后保卫细胞Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第33-34页 |
| 3．1．9 ABA处理叶片120min后保卫细胞Ce-H_2O_2的电子沉积物观察 | 第34-36页 |
| 3．1．10 胞外CAT预处理对ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生的影响 | 第36-37页 |
| 3．1．11 胞外DPI对ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生的影响 | 第37-38页 |
| 3．1．12 胞外Vc对ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生的影响 | 第38-39页 |
| 3．2 保卫细胞内H_2O_2产生的荧光探针检测 | 第39-43页 |
| 3．2．1 表皮条气孔活性检测 | 第39-40页 |
| 3．2．2 保卫细胞内H_2O_2产生的荧光观察 | 第40-41页 |
| 3．2．3 胞外AsA对ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生的影响 | 第41-43页 |
| 4． 讨论 | 第43-47页 |
| 4．1 保卫细胞内H_2O_2产生的电子密集沉积物检测 | 第43-46页 |
| 4．2 保卫细胞内H_2O_2产生的荧光探针检测 | 第46-47页 |
| 5． 结论 | 第47-48页 |
| 6． 参考文献 | 第48-55页 |
| 7． 致谢 | 第55页 |
