| 中文摘要 | 第1-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-31页 |
| 1 ω-3 PUFA、VE及二氢吡啶的研究进展 | 第13-24页 |
| ·ω-3 PUFA研究现状 | 第13-23页 |
| ·多不饱和脂肪酸结构组成 | 第13-14页 |
| ·ω-3PUFA的功能及其来源 | 第14-17页 |
| ·ω-3PUFA的生物学功能 | 第17-21页 |
| ·ω-3PUFA对生物膜的作用 | 第17-18页 |
| ·ω-3PUFA对机体免疫功能的影响 | 第18-20页 |
| ·ω-3PUFA对细胞因子的影响 | 第20-21页 |
| ·ω-3PUFA的研究现状 | 第21-23页 |
| ·抗氧化剂VE和二氢吡啶的免疫作用 | 第23-24页 |
| ·VE对机体的免疫作用 | 第23-24页 |
| ·二氢吡啶对机体的免疫作用 | 第24页 |
| 2 禽类INF-γ与IL-2的研究进展 | 第24-31页 |
| ·细胞因子的种类及作用 | 第24-25页 |
| ·INF-γ和IL-2的结构和性质 | 第25-27页 |
| ·INF-γ和IL-2的基因工程 | 第27-28页 |
| ·INF-γ和IL-2的生物学特性以及研究进展 | 第28-29页 |
| ·INF-γ和IL-2在禽类的应用展望 | 第29-31页 |
| 第二部分 本论文研究的目的和意义 | 第31-34页 |
| 1 研究主题的提出 | 第31-32页 |
| 2 本研究拟探讨的问题 | 第32-33页 |
| 3 本研究目的意义 | 第33-34页 |
| 第三部分 实验研究 | 第34-65页 |
| 试验一 在饲料中添加不同比例的ω-3PUFA对绍鸭肝脏和脾脏中INF-γ及IL-2的mRNA表达影响 | 第34-57页 |
| 1 材料和方法 | 第34-38页 |
| ·试验材料与动物 | 第34页 |
| ·试验设计及日粮组成 | 第34-37页 |
| ·试验设计 | 第34-35页 |
| ·饲养试验 | 第34页 |
| ·屠宰试验 | 第34-35页 |
| ·样品收集与保存 | 第35页 |
| ·日粮组成 | 第35页 |
| ·试验设计技术路线 | 第35-37页 |
| ·试验试剂 | 第37页 |
| ·脾脏和肝脏中总RNA提取试剂 | 第37页 |
| ·RT-PCR试剂 | 第37页 |
| ·普通PCR反应试剂 | 第37页 |
| ·荧光定量PCR反应试剂 | 第37页 |
| ·溶液的配制 | 第37-38页 |
| ·琼脂糖凝胶的制备 | 第38页 |
| ·仪器设备 | 第38页 |
| 2 试验方法 | 第38-42页 |
| ·总RNA的提取与检测 | 第38-40页 |
| ·总RNA的提取 | 第38-39页 |
| ·RNA的定量 | 第39-40页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第40页 |
| ·cDNA的合成 | 第40页 |
| ·普通PCR扩增 | 第40-41页 |
| ·PCR引物的设计与合成 | 第40-41页 |
| ·PCR扩增、产物回收、克隆测序 | 第41页 |
| ·实时荧光定量PCR反应 | 第41-42页 |
| ·Real-time RT-PCR条件的优化及标准曲线的建立 | 第41页 |
| ·熔解曲线分析 | 第41-42页 |
| ·重复性和再现性试验 | 第42页 |
| ·进行实时荧光定量PCR反应 | 第42页 |
| ·数据分析 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-54页 |
| ·肝脏和脾脏总RNA电泳结果 | 第42页 |
| ·绍鸭INF-γ和IL-2基因RT-PCR扩增及克隆测序 | 第42-43页 |
| ·SYBR Green I real-time RT-PCR条件的优化 | 第43页 |
| ·标准曲线 | 第43-45页 |
| ·标准品熔解曲线分析结果 | 第45-47页 |
| ·重复性和再现性 | 第47-48页 |
| ·RRT-PCR扩增曲线及熔解曲线结果 | 第48-51页 |
| ·INF-γ、IL-2及β-actin在不同组织中的扩增曲线 | 第48-49页 |
| ·INF-γ、IL-2样品熔解曲线 | 第49-51页 |
| ·不同饲养组中脾脏重量的变化情况 | 第51页 |
| ·INF-γ、IL-2在不同饲养组中mRNA表达情况 | 第51-54页 |
| ·INF-γ、IL-2在脾脏中的表达 | 第51-52页 |
| ·INF-γ、IL-2在肝脏中表达 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| ·ω-3PUFA对脾脏重量的影响 | 第54页 |
| ·ω-3PUFA对脾脏中INF-γ、IL-2的mRNA表达影响 | 第54-55页 |
| ·ω-3PUFA对肝脏中INF-γ、IL-2的mRNA表达影响 | 第55-56页 |
| 5 小结 | 第56-57页 |
| 试验二 在2%亚麻油的饲料中添加不同抗氧化剂对绍鸭肝脏和脾脏中INF-γ及IL-2的mRNA表达影响 | 第57-65页 |
| 1 材料和方法 | 第57-59页 |
| ·试验材料与动物 | 第57页 |
| ·试验设计及日粮组成 | 第57-58页 |
| ·试验设计 | 第57-58页 |
| ·日粮组成 | 第58页 |
| ·试验试剂 | 第58页 |
| ·溶液的配制 | 第58页 |
| ·琼脂糖凝胶的制备 | 第58-59页 |
| ·仪器设备 | 第59页 |
| 2 试验方法 | 第59页 |
| 3 结果与分析 | 第59-62页 |
| ·肝脏和脾脏总RNA电泳结果 | 第59页 |
| ·绍鸭INF-γ和IL-2基因RT-PCR扩增及克隆测序 | 第59页 |
| ·SYBR Green I real-time RT-PCR条件的优化 | 第59页 |
| ·标准曲线 | 第59页 |
| ·熔解曲线分析结果 | 第59页 |
| ·INF-γ、IL-2及β-actin在不同组织中的扩增曲线 | 第59页 |
| ·INF-γ、IL-2在不同饲养组中mRNA表达情况 | 第59-62页 |
| ·INF-γ、IL-2在脾脏中的表达 | 第59-61页 |
| ·INF-γ、IL-2在肝脏中的表达 | 第61-62页 |
| 4 讨论 | 第62-63页 |
| ·不同抗氧化剂VE、二氢吡啶对INF-γ、IL-2分子在脾脏中表达的影响 | 第62-63页 |
| ·不同抗氧化剂VE、二氢吡啶对INF-γ、IL-2分子在肝脏中表达的影响 | 第63页 |
| 5 小结 | 第63-65页 |
| 第四部分 结论与创新 | 第65-67页 |
| 1 研究结论 | 第65页 |
| 2 研究创新 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 英文摘要 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
