摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 引言 | 第13-34页 |
1.1 硫代葡萄糖甙概述 | 第13-23页 |
1.1.1 硫甙的生物合成、调控和转运 | 第13-17页 |
1.1.2 硫甙的生物学活性 | 第17-19页 |
1.1.3 硫甙的遗传多样性 | 第19-21页 |
1.1.4 硫甙合成关键基因AOPs基因的研究进展 | 第21-23页 |
1.2 分子标记辅助育种的研究进展 | 第23-27页 |
1.2.1 分子标记辅助育种的概念及特点 | 第23页 |
1.2.2 分子标记的类型 | 第23-24页 |
1.2.3 前景选择与背景选择 | 第24-26页 |
1.2.4 分子标记辅助育种在白菜类作物育种中上的应用 | 第26-27页 |
1.3 全基因组关联分析(GWAS)研究进展 | 第27-32页 |
1.3.1 全基因组关联分析的原理和方法 | 第28页 |
1.3.2 连锁不平衡(LD) | 第28-29页 |
1.3.3 植物代谢产物的全基因组关联分析 | 第29-32页 |
1.3.4 硫甙的全基因组关联分析 | 第32页 |
1.4 本研究的目的与意义 | 第32-34页 |
第二章 白菜硫甙的遗传多样性分析 | 第34-42页 |
2.1 材料与方法 | 第35-36页 |
2.1.1 植物材料 | 第35页 |
2.1.2 UPLC-qTOF-MS对白菜中硫甙的分析 | 第35页 |
2.1.3 统计分析 | 第35-36页 |
2.2 结果与分析 | 第36-40页 |
2.2.1 99份白菜材料硫甙分析 | 第36-37页 |
2.2.2 硫甙含量的相关性分析 | 第37-38页 |
2.2.3 白菜不同类群的硫甙差异 | 第38-39页 |
2.2.4 硫甙的主成分分析 | 第39-40页 |
2.3 讨论 | 第40-42页 |
第三章 白菜硫甙的全基因组关联分析 | 第42-56页 |
3.1 材料与方法 | 第43-44页 |
3.1.1 植物材料 | 第43页 |
3.1.2 UPLC-qTOF-MS对白菜中硫甙的检测 | 第43页 |
3.1.3 DNA测序及序列分析 | 第43页 |
3.1.4 99份白菜材料的进化树分析 | 第43页 |
3.1.5 99份白菜材料的连锁不平衡分析 | 第43-44页 |
3.1.6 99份白菜材料的群体结构分析 | 第44页 |
3.1.7 硫甙的全基因关联分析 | 第44页 |
3.2 结果与分析 | 第44-54页 |
3.2.1 99份材料SNP的检测 | 第44-46页 |
3.2.2 99份白菜材料的系统进化树分析 | 第46-47页 |
3.2.3 群体的连锁不平衡分析 | 第47-48页 |
3.2.4 硫甙自然变异的遗传机理分析 | 第48-49页 |
3.2.5 基因表达量与硫甙含量的相关性分析 | 第49-50页 |
3.2.6 硫甙的全基因关联分析 | 第50-54页 |
3.3 讨论 | 第54-56页 |
第四章 白菜高有益硫甙GRA材料的创制 | 第56-68页 |
4.1 材料与方法 | 第57-59页 |
4.1.1 实验材料 | 第57页 |
4.1.2 分子标记辅助育种的流程 | 第57-58页 |
4.1.3 BrAOP2.2和BrAOP2.3基因前景标记的开发 | 第58页 |
4.1.4 背景标记的开发 | 第58-59页 |
4.1.5 白菜中硫甙的粗提取及HPLC分析 | 第59页 |
4.1.6 R-O-18材料的BrAOP2酶的体外原核表达实验 | 第59页 |
4.1.7 数据分析 | 第59页 |
4.2 结果与分析 | 第59-66页 |
4.2.1 白菜不同类群的硫甙分析 | 第59-60页 |
4.2.2 Yellow Sarson材料的BrAOP2基因序列分析 | 第60-61页 |
4.2.3 Yellow Sarson材料的BrAOP2.2和BrAOP2.3基因丧失了催化活性 | 第61-62页 |
4.2.4 BrAOP2.2和BrAOP2.3基因的功能丧失的材料具有较高的GRA含量 | 第62-64页 |
4.2.5 braop2.2和braop2.3基因的替换增加了白菜中的GRA含量 | 第64-66页 |
4.3 讨论 | 第66-68页 |
第五章 全文总结 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-79页 |
附录 | 第79-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
作者简历 | 第93页 |