| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第9-37页 |
| 1.1 N~6-methyladenosine(m~6A)修饰 | 第9-21页 |
| 1.1.1 RNA的修饰 | 第9-10页 |
| 1.1.2 可逆的m~6A修饰 | 第10-15页 |
| 1.1.3 m~6A修饰的功能 | 第15-21页 |
| 1.2 病毒m~6A修饰的研究 | 第21-27页 |
| 1.2.1 m~6A在 RNA病毒感染中的影响 | 第22-24页 |
| 1.2.2 m~6A在 DNA病毒感染中的影响 | 第24-27页 |
| 1.3 肠病毒71型(enterovirus71,EV71) | 第27-35页 |
| 1.3.1 肠病毒 | 第27页 |
| 1.3.2 EV71 | 第27-35页 |
| 1.4 本研究的主要内容和意义 | 第35-37页 |
| 第2章 材料与方法 | 第37-61页 |
| 2.1 材料 | 第37页 |
| 2.1.1 细胞 | 第37页 |
| 2.1.2 菌株 | 第37页 |
| 2.1.3 病毒 | 第37页 |
| 2.1.4 质粒 | 第37页 |
| 2.2 主要试剂、仪器 | 第37-41页 |
| 2.3 主要培养基的配置 | 第41-42页 |
| 2.4 主要试剂的配置 | 第42-43页 |
| 2.5 实验方法 | 第43-61页 |
| 第3章 实验结果 | 第61-89页 |
| 3.1 EV71RNA基因组含有m~6A修饰 | 第61-63页 |
| 3.2 EV71感染影响m~6A甲基化酶、去甲基化酶和结合蛋白的表达及细胞定位 | 第63-66页 |
| 3.2.1 EV71感染影响m~6A甲基化酶、去甲基化酶和结合蛋白的表达 | 第63-64页 |
| 3.2.2 EV71感染影响m~6A甲基化酶、去甲基化酶和结合蛋白的细胞定位 | 第64-66页 |
| 3.3 m~6A甲基化酶和去甲基化酶调控EV71m~6A修饰和病毒复制 | 第66-72页 |
| 3.3.1 METTL3和FTO是 EV71m~6A修饰的甲基化酶和去甲基化酶 | 第66-70页 |
| 3.3.2 m~6A甲基化酶和去甲基化酶调控EV71复制 | 第70-72页 |
| 3.4 m~6A结合蛋白影响EV71复制 | 第72-75页 |
| 3.5 EV71RNA m~6A修饰位点突变影响病毒复制 | 第75-80页 |
| 3.5.1 EV71RNA上A3055和A4555是m~6A修饰位点 | 第75-77页 |
| 3.5.2 突变m~6A修饰位点抑制EV71复制 | 第77-80页 |
| 3.6 METTL3和EV713D蛋白相互作用且影响3D SUMO和泛素化修饰 | 第80-89页 |
| 3.6.1 METTL3与3D存在相互作用 | 第80-82页 |
| 3.6.2 3D与m~6A甲基化复合体主要蛋白存在相互作用 | 第82-83页 |
| 3.6.3 3D与METTL3的相互作用不依赖METTL3的催化活性 | 第83-84页 |
| 3.6.4 EV71RNA的m~6A修饰不依赖3D与甲基化酶的相互作用 | 第84-85页 |
| 3.6.5 METTL3促进3D蛋白SUMO化和泛素化修饰 | 第85-89页 |
| 第4章 讨论 | 第89-93页 |
| 第5章 总结与展望 | 第93-95页 |
| 5.1 总结 | 第93-94页 |
| 5.2 展望 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-113页 |
| 附录 | 第113-117页 |
| 致谢 | 第117-121页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第121页 |
